Антиоксидантная система в реализации защитного действия оксида азота на растения пшеницы в условиях дефицита влаги
17.11.2020
Авторы:
Название:
Антиоксидантная система в реализации защитного действия оксида азота на растения пшеницы в условиях дефицита влаги
Страницы:
318-323
Исследовали влияние донора оксида азота – нитропруссида натрия (sodium nitroprusside, SNP) – на рост и состояние компонентов антиоксидантной системы проростков пшеницы в условиях обезвоживания, моделируемого 12% ПЭГ. Выявлен защитный эффект предобработки 200 мкМ SNP на растения пшеницы, о чем свидетельствуют повышенное содержание глутатиона восстановленного (GSH), снижение стресс-индуцированного накопления МДА, и активности глутатион-S-трансферазы (GST), что отражается в поддержании высокого уровня ростовых процессов. Впервые показана роль белка агглютинина зародыша пшеницы (АЗП) в проявлении протекторного действия оксида азота на растения пшеницы в стрессовых условиях.
- Безрукова М. В., Фатхутдинова Р. А., Шакирова Ф. М. Защитное действие агглютинина зародыша пшеницы на протекание митоза в корнях проростков Triticum aestivum при воздействии кадмия // Физиология растений. 2016. Т. 63(3). С. 382-389. doi: 10.7868/S0015330316030027 2. Калинина Е.В., Чернов Н.Н., Новичкова М.Д. Роль глутатиона, глутатионтрансферазы и глутаредоксина в регуляции редокс-зависимых процессов // Успехи биологической химии. 2014. Т. 54. С. 316-324. 3. Колупаев Ю.Е., Карпец Ю.В. Роль сигнальных посредников и стрессовых гормонов в регуляции антиоксидантной системы растений // Физиология растений и генетика . 2017. Т. 79(6). С.463-481 4. Мамаева А.С., Фоменков А.А., Носов А.В., Мошков И.Е., Мур Л.А. Холл М.А., Новикова Г.В. Регуляторная роль оксида азота у растений // Физиология растений. 2015. Т. 62. С. 459-474. doi: 10.7868/S0015330315040132 5.Масленникова Д.Р., Плотников А.А., Шакирова Ф.М. Сравнительный анализ физиологического действия оксида азота и 6-бензиламинопурина на состояние компонентов глутатионового комплекса в корнях проростков пшеницы // Агрохимия. 2019. № 3. С. 37-43. doi:10.1134/S0002188119030104 6. Шакирова Ф.М., Безрукова М.В. Изменение содержания АБК и лектина в корнях проростков пшеницы под влиянием 24-эпибрассинолида и засоления. Физиология растений. 1998. Т. 45. С. 451-455. 7. Arora D., Jain P., Singh N., Kaur, H., Bhatla, S.C. Mechanisms of nitric oxide crosstalk with reactive oxygen species scavenging enzymes during abiotic stress tolerance in plants // Free Radical Res. 2016. V. 50(3). P. 291-303. doi:10.3109/10715762.2015.1118473 8. Asgher M., Per T.S., Masood A., Fatma M., Freschi L., Corpas F. J., Khan N.A. Nitric oxide signaling and its crosstalk with other plant growth regulators in plant responses to abiotic stress // Environ Sci Pollut Res. 2017. V. 24. P. 2273-2285. doi:10.1007/s11356-016-7947-8 9. Bezrukova M., Kildibekova A., Shakirova F. WGA reduces the level of oxidative stress in wheat seedlings under salinity // Plant Growth Regul. 2008. V. 54. P. 195–201. doi:10.1007/s10725-007-9248-1 10. Bradford M.M. A rapid and sensitive methods for quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding // Anal. Biochem. 1976. V. 72. P. 248-254. 11. Ding Y., Gardiner D.M., Kazan K. Regulators of nitric oxide signaling triggered by host perception in a plant pathogen // PNAS. 2020. V. 117(20). P. 11147-11157. doi:10.1073/pnas.1918977117 12. Liu S., Dong Y.J., Xu L.L., Kong J., Bai X.Y. Roles of exogenous nitric oxide in regulating ionic equilibrium and moderating oxidative stress in cotton seedlings during salt stress // J. Soil Sci. Plant Nutr. 2013. V.13(4). P. 929-941. doi:10.4067/S0718-95162013005000073. 13. Maslennikova D.R., Allagulova Ch.R., Fedorova K.A., Plotnikov A.A., Avalbaev A.M., Shakirova F. M Cytokinins contribute to realization of nitric oxide growth-stimulating and protective effects on wheat plants // Russian Journal of Plant Physiology. 2017. V. 64(5). P. 665–671. doi:10.1134/S1021443717040094 14. Nabi R.B.C, Tayade R., Hussain A., Kulkarni K. P., Imran Q. M., B.-G. Mun, B-W Yun Nitric oxide regulates plant responses to drought, salinity, and heavy metal stress // Environmental and Experimental Botany. 2019. V.161. P. 120–133. doi:10.1016/j.envexpbot.2019.02.003 15. Shan Ch., Zhou Y., M. Liu Nitric oxide participates in the regulation of the ascorbate-glutathione cycle by exogenous jasmonic acid in the leaves of wheat seedlings under drought stress // Protoplasma. 2015. V. 252. P. 1397–1405. doi:10.1007/s00709-015-0756-y