Biomics

В работе исследованы пять штаммов R. leguminosarum, выделенных из клубеньков растений гороха. Оценкой кинематической вязкости бесклеточных культуральных жидкостей был установлен штамм бактерий (V30), у которого данный показатель превосходил в несколько раз показатели вязкости среды роста бактерий остальных штаммов и соответствовал значению 30 мм2 /с. При экстракции этанолом из культуральной жидкости бактерий R. leguminosarum V30 был получен студенистый, прозрачный осадок полисахаридов, который после высушивания формировал светлый порошок, растворимый в воде. Проведѐнные исследования позволили выделить новый штамм бактерий R. leguminosarum с высоким биотехнологическим потенциалом, рост которых на дешевом субстрате позволяет за 5-6 суток получить большой объем культуральной жидкости с высокой кинематической вязкостью. Экстракция ценного метаболита R. leguminosarum осуществляется простым способом и позволяет выделить до 5 г полисахаридного препарата из 1 л культуральной жидкости.

кинематическая вязкость, периодическое культивирование; экзополисахариды; Rhizobium

1. Алѐшин М. А. Влияние инокуляции и доз азотных удобрений на крупяные свойства и урожайность посевного гороха в условиях дерновоподзолистой тяжелосуглинистой почвы Предуралья // Пермский аграрный вестник. 2018. №. 1 (21). С. 48-53

2. Глянько А. К. Сигнальные системы ризобий (Rhizobiaceae) и бобовых растений (Fabaceae) при формировании бобово-ризобиального симбиоза (Обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2015. Т. 51. №. 5. С. 453-453. DOI:
10.7868/S0555109915050062

3. Кузнецов В. В., Кузнецов В. В., Романов Г. А. Молекулярно-генетические и биохимические методы в современной биологии растений. М.: Бином. Лаб. знаний, 2012. 487 с.

4. Малышева Ю. Б., Федоров А. Ю., Старостина Т. И. Идентификация органических веществ. Нижний Новгород: ННГУ, 2010. 34 с.

5. Мялова Л.А. Корневой рак плодовых культур в условиях юга Украины и меры борьбы с ними: сб. материалов конференции. Фитонциды. Бактериальные болезни растений / Под ред. Гвоздяк Р.И [и др.]. Киев-Львов: КГТ-2,1990. Ч.2. С. 129-130.

6. Теппер Е.З., Шильникова В.К., Переверзева Г.И. Практикум по микробиологии. Издательство «Колос». 1972г. 216 с.
7. Хоулт Дж., Криг Н. Определитель бактерий Берджи // М.: Мир. 1997. Т. 1. С. 432.

8. Davoodi, A., & Hajivand, S. Isolation of Agrobacterium tumefaciens strains from crown gall disease on imported roses plants in qazvin province // Journal of Ornamental and Horticultural Plants. 2013, V. 3, № 2, pp. 117-124.

9. Nwodo U. U., Green E., Okoh A. I. Bacterial exopolysaccharides: functionality and prospects // International Journal of Molecular Sciences. 2012. V. 13(11). P. 14002-14015. DOI: 10.3390/ijms131114002

10. Poli A., Anzelmo G., Nicolaus B. Bacterial exopolysaccharides from extreme marine habitats: production, characterization and biological activities // Marine Drugs. 2010. V. 8(6). P. 1779-1802. DOI: 10.3390/md8061779

11. Rühmann B., Schmid J., Sieber V. Methods toidentify the unexplored diversity of microbial exopolysaccharides // Frontiers in microbiology. 2015. V. 6. P. 565. DOI: 10.3389/fmicb.2015.00565