Мультиплексный in silico RAPD-анализ ряда родственных растений с отличающимися размерами геномов и перспективы такого подхода для ДНК-паспортизации сортов сельскохозяйственных растений
24.08.2020
Авторы:
Название:
Мультиплексный in silico RAPD-анализ ряда родственных растений с отличающимися размерами геномов и перспективы такого подхода для ДНК-паспортизации сортов сельскохозяйственных растений
Страницы:
194-210
Для нескольких видов растений проведен мультиплексный in silico RAPD-анализ их полных геномов, заметно различающихся своими размерами. Из семейства Крестоцветных исследованы три разновидности резуховидки Таля Arabidopsis thaliana, имеющие геном размером около 135 млн. пар нуклеотидов (п.н.). Из семейства Пасленовых проанализированы картофель Solanum tuberosum и томат S.lycopersicum с геномами 840 и 828 млн.п.н. соответственно. Из семейства Злаковых в анализ взяты два подвида риса Oryza sativa indica и O.sativa japonica (по 500 млн.п.н.), диплоидные пшеница Triticum urartu (5 млрд.п.н.) и эгилопс Aegilops tauschii (4,3 млрд.п.н.), а также тетраплоидные пшеницы T.turgidum и T.dicoccoides (оба вида имеют геномы около 12 млрд.п.н.) и гексаплоидная мягкая пшеница T.aestivum, имеющая геном размером около 17 млрд.п.н. Биоинформатический in silico анализ на наличие мест отжига в этих геномах комплекта декамерных праймеров проводился с помощью созданной нами ранее программы ABCDNA_GS. Особенностью праймеров, содержащих 40% G и C оснований, является их тринуклеотидный состав с полным отсутствием тиминов, способствующий исключению образования гомо- и гетеродимеров таких праймеров. Показано, что для растений с малыми размерами геномов (на примере семейства Крестоцветных) удовлетворительный уровень полиморфизма ДНК достигается при использовании в мультиплексном анализе комплекта из 12 праймеров, тогда как для крупных геномов вполне достаточно 6 таких праймеров. Предлагается модифицировать метод RAPD-анализа таким образом, что будут учитываться только короткие ампликоны, которые можно разделять капиллярным гель-электрофорезом и измерять их длины с точностью до нуклеотида. Выбранный диапазон разделения ампликонов от 51 до 500 нуклеотидов вмещает 450 воображаемых ДНК‑ячеек, которые обозначаются как ДНК[+]‑ячейка при наличии в ней фрагмента(ов) ДНК и ДНК[‑]‑ячейка при их отсутствии, что в двоичном счислении отображается как «1» и «0» соответственно. Приведены подсчеты количества возможных комбинаций при разной заполненности таких воображаемых ДНК‑ячеек, превышающих в ряде случаев гугол (10100). На основе полученных in silico результатов построены генетические штрих-коды, дающие возможность визуального наблюдения отличий проанализированных видов растений. Выявленные у разновидностей резуховидок и подвидов риса минорные различия позволяют прогнозировать применимость такого подхода к однозначной ДНК-паспортизации сортов растений. Причем данный подход может быть вполне применим и к породам животных, расам грибов и даже штаммам микроорганизмов, требуя лишь корректировки числа мультиплексных праймеров в зависимости от размеров геномов исследуемых видов. Помимо RAPD-анализа, для целей ДНК-паспортизации могут применяться и иные методы детекции полиморфизма ДНК, обеспечивающие точное установление размеров образующихся ампликонов. Биоинформатический анализ полных геномов исследуемых видов с помощью программы ABCDNA_GS может также служить в этих случаях для прогнозирования результатов и предварительного выбора комплектов мультиплексных праймеров. Отмечается, что подобная ДНК-паспортизация крайне важна для селекционных работ и аграрного производства.
- Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В., Вахитов В.А. Анализ информативности некоторых современных методов идентификации полиморфизма ДНК микроорганизмов на примере симбиотических клубеньковых бактерий Rhizobium galegae // Генетика. 1999. Т.35. С.1613-1621. 2. Гарафутдинов Р.Р., Баймиев Ан.Х., Малеев Г.В., Алексеев Я.И., Зубов В.В., Чемерис Д.А., Кирьянова О.Ю., Губайдуллин И.М., Матниязов Р.Т., Сахабутдинова А.Р., Никоноров Ю.М., Кулуев Б.Р., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Разнообразие праймеров для ПЦР и принципы их подбора. Биомика. 2019. Т.11(1). С. 23 – 70. DOI:10.31301/2221-6197.bmcs.2019-04 3. Гарафутдинов Р.Р., Гайнуллина К.П., Кирьянова О.Ю., Юрина А.В., Долматова И.Ю., Логинов О.Н., Чемерис А.В. Полиморфизм ДНК лошади Equus caballus и методы его выявления // Биомика. 2020. Т.12(2). С. 272-299. DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2020-16 4. Кирьянова О.Ю., Кирьянов И.И., Кулуев Б.Р., Чемерис А.В., Гарафутдинов Р.Р., Губайдуллин И.М. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2020610703 ABCDNA_GS (Amplified Bar-Coded DNA Genome/Specimen) от 17.01.2020 г. 5. Конарев А.В., Гаврилюк И.П., Мигушова Э.Ф. Дифференциация диплоидных пшениц по данным иммунохимического анализа глиадина // Доклады ВАСХНИЛ. 1974. №6. С.12. 6. Кулуев А.Р., Матниязов Р.Т., Чемерис Д.А., Чемерис А.В. Современные представления о родственных взаимоотношениях в пшенично-эгилопсном альянсе (с краткой исторической справкой) // Биомика. 2016. Т. 8. № 4. С. 297-310. 7. Кулуев Б.Р. Методы ПЦР для выявления мультилокусного полиморфизма ДНК у эукариот, основанные на случайном праймировании / Кулуев Б.Р., Баймиев Ан.Х., Геращенков Г.А., Чемерис Д.А., Зубов В.В., Кулуев А.Р., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. // Генетика. 2018. Т. 54. С. 495-511. DOI:10.7868/S0016675818050016 8. Нигматуллина Н.В., Кулуев А.Р., Кулуев Б.Р. Молекулярные маркеры, применяемые для определения генетического разнообразия и видоидентификации дикорастущих растений. Биомика. 2018. Т10(3). С. 290-318. DOI:10.31301/2221-6197.bmcs.2018-39 9. Сухарева А.С., Кулуев Б.Р. ДНК-маркеры для генетического анализа сортов культурных растений // Biomics. 2018. Т. 10. №1. С. 69–84. DOI:10.31301/2221-6197.bmcs.2018-15 10. Beier S., Thiel T., Münch T., Scholz U., Mascher M. MISA-web: a web server for microsatellite prediction // Bioinformatics. 2017. V.33. P.2583–2585. doi:10.1093/bioinformatics/btx198 11. Corley-Smith G.E., Lim C.J., Kalmar G.B., Brandhorst B.P. Efficient detection of DNA polymorphisms by fluorescent RAPD analysis // Biotechniques. 1997. V. 22. P. 690-699. doi:10.2144/97224st04 12. Jiang B., Zhao Y., Yi H., Huo Y., Wu H., Ren J., Ge J., Zhao J., Wang F. PIDS: A user-friendly plant DNA fingerprint Database management system // Genes (Basel). 2020. V.11(4):373. doi:10.3390/genes11040373 13. Latorra D., Campbell K., Wolter A., Hurley J.M. Enhanced allele-specific PCR discrimination in SNP genotyping using 3' locked nucleic acid (LNA) primers // Hum Mutat. 2003. V. 22(1). P. 79-85. doi:10.1002/humu.10228 14. Stupar R.M., Song J., Tek A.L., Cheng Z., Dong F., Jiang J. Highly condensed potato pericentromeric heterochromatin contains rDNA-related tandem repeats // Genetics. 2002. V.162(3). P.1435-1444. 15. van Steenbergen T.J., Colloms S.D., Hermans P.W., de Graaff J., Plasterk R.H. Genomic DNA fingerprinting by Restriction Fragment End Labeling // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V.92(12). P.5572-5576. doi:10.1073/pnas.92.12.5572 16. Williams J.G., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers // Nucleic Acids Res. 1990. V. 18. P. 6531-6535. doi:10.1093/nar/18.22.6531 17. Yu J., Dossa K., Wang L., Zhang Y., Wei X., Liao B., Zhang X. PMDBase: A database for studying microsatellite DNA and marker development in plants // Nucleic Acids Res. 2017. V.45(D1). D1046-D1053. doi:10.1093/nar/gkw906 18. Zhou, H., Zhang, P., Luo, J. et al. The establishment of a DNA fingerprinting database for 73 varieties of Lactuca sativa capitate L. using SSR molecular markers // Hortic. Environ. Biotechnol. 2019. V.60. P. 95–103. doi:10.1007/s13580-018-0102-3