Проведено изучение применения различных схем стрессорного воздействия повышенной температурой для селективного отбора клеточных линий пшеницы на термоустойчивость. Установлено, что наличие эндофитной бактериальной инфекции кардинально изменяет также морфогенетические процессы in vitro. Эндофитный патоген идентифицирован как один из штаммов Pseudomonas syringae. Фактором, стимулирующим проявление бактериальной инфицированности, явился температурный стресс.
Нгуен Тхи ли ань Повышение устойчивости яровой пшеницы к абиотическим стрессам методами биотехнологии // Автореф. дис. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. СПб. 1995. 22с. (In Russian) [Nguyen Thi Li an. Increasing the stability of spring wheat to abiotic stress by methods of biotechnology//Author's abstract. Dis.attain.of a scien. degreeof biol. sciences . 1995.22P].
Никитина Е.Д., Хлебова Л.П. Особенности морфогенеза яровой мягкой пшеницы в культуре in vitro в зависимости от условий произрастания // Ульяновский медико-биологический журнал. 2015.№2. С.125–131. (In Russian) [Nikitina E.D., Khlebova L.P. Features of morphogenesis of spring wheat in culture in vitro depending on the growth conditions. // Ulyanovsk Medical Biological Journal. 2015. N2. P. 125–131].
Самедов А.Н., Могелевская М.Н., Алиев Дж.А., Алиев Л.А. К вопросу о возбудителях бактериозов винограда // Изв. АН Аз.ССР (сер. биол. наук). 1988. N5. С. 26-31. (In Russian) [Samedov A.N., Mogelevskaya M.N., Aliyev J.A., Aliyev L.A.On the issue of exciters of bacteriosis of grapes // Proceedings of the Acad. Sci. Az. SSR (biol. sci.) 1988. N5. P. 26-31].
Самедов А.Н., Могелевская М.Н., Карагезов Т.Г., ХудавердиеваС.Р., Алиев Л.А. Обнаружение возбудителей бактериозов винограда на территории Апшерона //Изв. АН. Аз. ССР (сер. биол. наук). 1988. №6. С.18-23. (In Russian). [Samedov A.N., Mogelevskaya M.N., Karagezov T.G., Khudaverdieva S.R., Aliyev L.A. Detection of exciters of bacteriosis of grapes in the territory of Apsheron // Proceedings of the Acad. Sci. Az. SSR (biol. sci.). 1988. N6. P. 18-23].
Abouzied H.M. Assessment of genetic diversity among wheat somaclonal variants lines using morphological traits and molecular markers // Afr. J. Biotechnol. 2011. V. 1(66). P. 1451–1486. doi:10.5897/AJB11.1759
Akhtar S., Niaz M., Rahman S., Asif M. Study of somaclonal variation in wheat for the induction of salinity tolerance // J. Agric. Res. 2012. V. 50(2). P. 165–176.
Hussain M., Khan G.S., Shaheen M.S., Ahmad M. Somaclonal variation in regenerated plants of ten wheat genotypes // J. Agric. Res. 2001. V. 39. № 11. P. 1–7.
Kaepler S.M., Kaepler H.F., Rhee Y. Epigenetic aspects of somaclonal variation in plants // Plant. Mol. Biol. 2000. V. 43. P. 179–188.
Larkin P.J., Scowcroft W.R. A novel source of variability from cell cultures for plant improvement // Theor. Appl. Genet. 1981. V. 60. N4. P. 97–214.
Miguel C., Marum L. An epigenetic view of plant cells cultured in vitro: somaclonal variation and beyond // Journal of Experimental Botany. 2011. V. 62. N 11. P. 3713–3725.doi:10.1093/jxb/err155
Murashiqe T., Skoog F.A. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Phisiol. Plant. 1962. V.15. N 13. P. 473 -497.
Rakoczy-Trojanowska M. The effect of growth regulators on somaclonal variation in rye (Secale cereale L.) and selection of somaclonal variants with increased agronomic traits // Cell Mol. Biol. 2002. V. 7. P. 1111–1120.