eISSN: 2221-6197 DOI: 10.31301/2221-6197

Термостабильные ДНК-полимеразы в до-ПЦРную эпоху и в самом её начале

Год: 2026

Страницы: 130-135

Номер: Том 18, № 2

Тип: научная статья

Аннотация:

Впервые термостабильная ДНК полимераза из термофильной бактерии Thermus aquaticus выделена в 1976 г., но её применение в ПЦР началось только спустя более десяти лет при том, что сама ПЦР была разработана за несколько лет до этого. К моменту начала применения в ПЦР этого фермента вместо Кленовского фрагмента ДНК-полимеразы I Ecoli уже были известны, помимо Taq-полимеразы, ДНК-полимеразы из родственных эубактерий T. thermophilus, T. flavus, T. ruber, а также ДНК-полимеразы из термофильных архей Sulfolobus acidocaldarius, S. solfataricus и Methanobacterium thermoautotrophicum. Однако прошло немало лет, прежде чем некоторые из них стали использоваться в ПЦР.

Ключевые слова:

ДНК-полимераза, Кленовский фрагмент ДНК-полимеразы I E.coli, термостабильная ДНК-полимераза, ДНК, ПЦР, Thermus aquaticus

Библиографический список:

  1. Гарафутдинов Р.Р., Баймиев Ан.Х., Сахабутдинова А.Р. и др. ДНК-зависимые ДНК-полимеразы. Biomics. 2026. 18(1). 120-129. DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2026-9
  2. Каледин А.С., Слюсаренко А.Г., Городецкий С.И. Выделение и свойства ДНК-полимеразы из экстремально-термофильной бактерии Thermus aquaticus YT Биохимия. 1980. 45(4). 644-651.
  3. Каледин А.С., Слюсаренко А.Г., Городецкий С.И. Выделение и свойства ДНК-полимеразы из экстремально-термофильной бактерии Thermus flavus. Биохимия. 1981. 46(9). 1576-1581.
  4. Каледин А.С., Слюсаренко А.Г., Городецкий С.И. Выделение и свойства ДНК-полимеразы из экстремально-термофильной бактерии Thermus ruber. Биохимия. 1982. 47(11). 1785-1791.
  5. Прангишвили Д.А. ДНК-зависимые ДНК-полимеразы термоацидофильной архебактерии Sulfolobus acidocaldarius. Молекул. Биология. 1985. 19(2). 477-488.
  6. Bessman MJ, Kornberg A, Lehman IR et al. Enzymic synthesis of deoxyribonucleic acid. Biophys. Acta. 1956. 21(1). 197-198. doi: 10.1016/0006-3002(56)90127-5
  7. Braithwaite DK, Ito J. Compilation, alignment, and phylogenetic relationships of DNA polymerases. Nucleic Acids Res. 1993. 21(4). 787-802. doi: 10.1093/nar/21.4.787
  8. Brock TD. The value of basic research: discovery of Thermus aquaticus and other extreme thermophiles. Genetics. 1997. 146(4). 1207-1210. doi: 10.1093/genetics/146.4.1207
  9. Brock TD, Freeze H. Thermus aquaticus n. and sp. n., a nonsporulating extreme thermophile. J Bacteriol. 1969. 98(1). 289-297. doi: 10.1128/jb.98.1.289-297.1969
  10. Chien A, Edgar DB, Trela JM. Deoxyribonucleic acid polymerase from the extreme thermophile Thermus aquaticus. J Bacteriol. 1976. 127(3). 1550-1557. doi: 10.1128/jb.127.3.1550-1557.1976
  11. Freeze H, Brock TD. Thermostable aldolase from Thermus aquaticus. J Bacteriol. 1970. 101(2). 541-550. doi: 10.1128/jb.101.2.541-550.1970
  12. Fuller CW. Cycle sequencing with non-thermostable DNA polymerase. US Patent 5,432,065, Jul. 11, 1995
  13. Ito J, Braithwaite DK. Compilation and alignment of DNA polymerase sequences. Nucleic Acids Res. 1991. 19(15). 4045-4057. doi: 10.1093/nar/19.15.4045
  14. Joyce CM, Grindley ND. Construction of a plasmid that overproduces the large proteolytic fragment (Klenow fragment) of DNA polymerase I of Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci USA. 1983. 80(7). 1830-1834. doi: 10.1073/pnas.80.7.1830
  15. Klimczak LJ, Grummt F, Burger KJ. Purification and characterization of DNA polymerase from the archaebacterium Sulfolobus acidocaldarius. Nucleic Acids Res. 13(14). 5269-5282. doi: 10.1093/nar/13.14.5269
  16. Kogan SC, Doherty M, Gitschier J. An improved method for prenatal diagnosis of genetic diseases by analysis of amplified DNA sequences. Application to hemophilia A. New Engl. J. Med. 1987. 317(16). 985-990. doi: 10.1056/NEJM198710153171603
  17. Rüttimann C, Cotorás M, Zaldívar J et al. DNA polymerases from the extremely thermophilic bacterium Thermus thermophilus HB-8. Eur J Biochem. 1985. 149(1). 41-46. doi: 10.1111/j.1432-1033.1985.tb08890.x
  18. Saiki RK, Gelfand DH, Stoffel S et al. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science. 1988. 239(4839). 487-491. doi: 10.1126/science.2448875
  19. Saiki RK, Scharf S, Faloona F et al. Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science. 1985. 230(4732). 1350-1354. doi: 10.1126/science.2999980
  20. Stenesh J, McGowan GR. DNA polymerase from mesophilic and thermophilic bacteria. III. Lack of fidelity in the replication of synthetic polydeoxyribonucleotides by DNA polymerase from Bacillus licheniformis and Bacillus Biochim Biophys Acta. 1977. 475(1). 32-41. doi: 10.1016/0005-2787(77)90336-7
  21. Stenesh J, Roe BA. DNA polymerase from mesophilic and thermophilic bacteria: I. Purification and properties of DNA polymerase from Bacillus licheniformis and Bacillus stearothermophilus. Biophys. Acta. 1972. 272(2). 156-166. doi: 10.1016/0005-2787(72)90240-7
  22. Stenesh J, Roe BA. DNA polymerase from mesophilic and thermophilic bacteria: II. Temperature dependence of nearest neighbor frequencies of the product from the DNA polymerase reaction. Biophys. Acta. 1972. 272(2). 167-178. doi: 10.1016/0005-2787(72)90241-9
Скачать pdf
наверх
eISSN: 2221-6197 DOI: 10.31301/2221-6197