Biomics

В работе показана способность сапротрофных грибов разных экологических групп – гумусовых (Agaricus bisporus, A. arvensis) и ксилотрофных базидиомицетов (Lentinus edodes, Pleurotus ostreatus, Ganoderma lucidum, Grifola frondosa) к восстановлению ионов золота, серебра и селена до элементного состояния с образованием наночастиц. Рассмотрено влияние соединений металлов и металлоидов на параметры роста и накопления биомассы грибов; определены оптимальные условия культивирования и концентрации изученных ионсодержащих соединений для получения наночастиц. Экстра- и внутриклеточные экстракты из базидиальных грибов были способны к биоредукции соединений HAuCl4, AgNO3 и Na2SeO3 до Au0, Ag0 и Se0/SeO2 с образованием наночастиц, а также к образованию наночастиц кремния из Na2SiO3. Форма, размер и агрегационные свойства наночастиц зависели как от видов грибов, так и от типа экстракта. Цитотоксичность образующихся наночастиц Au0 была пренебрежимо мала в широком диапазоне концентраций (от 1 до 100 мкг/мл), тогда как наночастицы Ag0 были нетоксичными от 1 до 10 мкг/мл.

наночастицы, «зеленый синтез», сапротрофные базидиальные макромицеты, внеклеточные и внутриклеточные экстракты

1. Castro-Longoria E. Fungal biosynthesis of nanoparticles, a cleaner alternative. In: Purchase D. (Ed.), Fungal applications in sustainable environmental biotechnology. 2016. Springer International Publishing, Switzerland. P. 323-352.
2. Asmathunisha N., Kathiresan K. A review on biosynthesis of nanoparticles by marine organisms. Colloids Surf. B. 2013. V. 103. P. 283-287. doi:10.1016/j.colsurfb.2012.10.030
3. Atila F., Owaid M.N., Shariati M.A. The nutritional and medical benefits of Agaricus bisporus: a review. The Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences. 2017. V. 7. P. 281-286. doi:10.15414/jmbfs.2017/18.7.3.281-286
4. Bhainsa K.C., D’Souza S.F. Extracellular biosynthesis of silver nanoparticles using the fungus Aspergillus fumigatus. Colloids Surf. B. 2006. V. 47. P. 160-164. doi:10.1016/j.colsurfb.2005.11.026
5. Binupriya A.R., Sathishkumar M., Vijayaraghavan K., Yun S.-I. Bioreduction of trivalent aurum to nano-crystalline gold particles by active and inactive cells and cell-free extract of Aspergillus oryzae var. viridis. Journal of Hazardous Materials. 2010. V. 177. P. 539-545. doi:10.1016/j.jhazmat.2009.12.066
6. Ingle A., Gade A., Pierrat S., Sönnichsen C., Rai M. Mycosynthesis of silver nanoparticles using the fungus Fusarium acuminatum and its activity against some human pathogenic bacteria. Current Nanoscience. 2008. V.4. P.141-144. doi:10.2174/157341308784340804
7. Kathiresan K., Manivannan S., Nabeel M.A., Dhivya B. Studies on silver nanoparticles synthesized by a marine fungus, Penicillium fellutanum isolated from coastal mangrove sediment. Colloids Surf. B. 2009. V. 71. P. 133-137. doi:10.1016/j.colsurfb.2009.01.016
8. Kharissova O.V., Rasika Dias H.V., Kharisov B.I., Olvera Pérez B., Jiménez Pérez, V.M. The greener synthesis of nanoparticles. Trends Biotechnol. 2013. V. 31. P. 240-248. doi:10.1016/j.tibtech.2013.01.003
9. Mukherjee P., Ahmad A., Mandal D., Senapati S., Sainkar S.R., Khan M.I., Ramani R., Parischa R., Ajayakumar P.V., Alam M., Sastry M., Kumar R. Bioreduction of AuCl4− ions by the fungus, Verticillium sp. and surface trapping of the gold nanoparticles formed. Angewandte Chemie International Edition. 2001. V. 40. No 19. P. 3585-3588. doi:10.1002/1521-3773(20011001)40:19
10. Sarkar J., Dey P., Saha S., Acharya K. Mycosynthesis of selenium nanoparticles. Micro and Nano Letters. 2011. V. 6. No. 8. P. 599-602. doi:10.1049/mnl.2011.0227
11. Singh P., Kim Y.-J., Zhang D., Yang, D.-C. Biological synthesis of nanoparticles from plants and microorganisms. Trends Biotechnol. 2016. V. 34. V. 588-599. doi:10.1016/j.tibtech.2016.02.006
12. Zare B., Babaie S., Setayesh N., Shahverdi A.R. Isolation and characterization of a fungus for extracellular synthesis of small selenium nanoparticles. Nanomed. J. 2013. V. 1. No. 1. P. 13-19. doi:10.7508/nmj.2013.01.002