eISSN: 2221-6197 DOI: 10.31301/2221-6197

Biomics

Архив номеров

Индексирование
  1. Главная
  2. →
  3. 2017
  4. →
  5. Том 9, № 4
  6. →
  7. Статьи
  8. →
  9. Оптимизация состава питательной среды для индукции каллусообразования у ячменя сорта Steptoe и его АБК-дефицитного мутанта AZ34

Оптимизация состава питательной среды для индукции каллусообразования у ячменя сорта Steptoe и его АБК-дефицитного мутанта AZ34

Год: 2017

Страницы: 298-303

Номер: Том 9, № 4

Тип: научная статья

Рубрика: Статьи

Авторы: Сельдимирова О.А., Круглова Н.Н, Веселов Дмитрий Станиславович, Яновская А.А.!

Скачать pdf

Аннотация:

Изучали влияние состава индукционной питательной среды на эффективность каллусогенеза и последующую способность полученных каллусов к регенерации у ячменя сорта Steptoe и его АБКдефицитного мутанта AZ34. Отмечено значительное влияние ряда веществ на ростовые показатели каллусов и их способность к регенерации. Установлено, что для ячменя сорта Steptoe наиболее эффективно введение в базовую среду Мурасиге-Скуга 0.2 мг/л 24-эпибрассинолида в качестве регулятора роста, стимулирующего синтез эндогенных цитокининов, и повышение содержания сульфата меди до 12.5 мг/л. Для AZ34 требуется дополнительное введение в состав питательной среды АБК в концентрации 0.5 мг/л. Обсуждается возможность использования каллусов гормональных мутантов в качестве моделей для изучения взаимодействия гормонов в ходе развития растений.

Ключевые слова:

ячмень, каллус, способность к регенерации, АБК, 24-эпибрассинолид, сульфат меди

Библиографический список:

  1. Бутенко Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М.: ФБК-ПРЕСС1999. 152 с.
  2. Круглова Н.Н. Каллус как модель для изучения формирования структуры высшего растения // Известия Уфимского НЦ РАН. 2011. № 3-4. С. 17–22.
  3. Круглова Н.Н.Сельдимирова О.А. Морфогенез в андроклинных каллусах злаков: цито-гистологические особенности. Успехи современной биологии. 2010. Т. 130. С. 247–257.
  4. Овчинникова В.Н.Варламова Н.В.Мелик-Саркисов О.С.Харченко П.Н.Майсурян А.Н.Щербачев В.В.Мартиросян Ю.Ц. Индукция каллусообразования и регенерации растений ячменя Hordeum vulgare L. в культуре зародышей // Сельскохозяйственная биология. 2006. № 1. С. 74–79.
  5. Bohn-Courseau I. Auxin: A major regulator of organogenesis // C R Biologies. 2010. V. 333. P. 290–296. DOI:10.1016/j.crvi.2010.01.004
  6. Buck-Sorlin G.Hemmerling R.Kniemeyer j.Burema B.Kurth W. A rule-based model of barley morphogenesiswith special respect to shading and gibberellic acid signal transduction // Ann Bot. 2008. V. 101. P. 1109–1123. DOI:10.1093/aob/mcm172
  7. Carciofi M.Blennow A.Nielsen M.M.Holm P.B.Hebelstrup K.H. Barley callus: a model system for bioengineering of starch in cereals // Plant Methods. 2012. V. 8: 36. DOI:10.1186/1746-4811-8-36
  8. Cheon J.Park S.-Y.Schulz B.Choe S. Arabidopsis brassinosteroid biosynthetic mutant dwarf7-1 exhibits slower rates of cell division and shoot induction // BMC Plant Biology. 2010. V. 10: 270. DOI:10.1186/1471-2229-10-270
  9. Chernobrovkina M.A.Karavaev Ch.A.Kharchenko P.N.Melik-Sarkisov O.S. Somatic embryogenesis and morphogenetic potential of spring barley (Hordeum vulgare L.) in the system of technological genetic transformation // Biology Bulletin. 2004. V. 31. P. 332–336. DOI:10.1023/B:BIBU.0000036935.80745.6c
  10. Ding Z.De Smet I. Localised ABA signalling mediates root growth plasticity // Trends in Plant Sci. 2013. V. 18. P. 533-535. DOI:10.1016/j.tplants.2013.08.009
  11. Gazzarini S.Mccourt P. Cross-talk in plant hormone: What arabidopsis mutant are telling us // Ann Bot. 2004. V. 91. P. 605–612. DOI:10.1093/aob/mcg064
  12. Gupta S.Rashotte A. M. Down-stream components of cytokinin signaling and the role of cytokinin throughout the plant // Plant Cell Rep. 2012. V. 31. P. 801–812. DOI:10.1007/s00299-012-1233-0
  13. Hu Y.X.Bao F.Li J.Y. Promotive effect of brassinosteroids on cell division involves a distinct Cyc D3-induction pathway in Arabidopsis // Plant J. 2000. V. 24. P. 693–701. DOI:10.1046/j.1365-313x.2000.00915.x
  14. Jiménez V.M.Thomas C. Participation of plant hormones in determination and progression of somatic embryogenesis // Somatic Embryogenesis / Eds. A. MujiJ. Šamaj. Springer2006. P. 103-118. DOI:10.1007/7089_034
  15. Kende H. Hormone response mutants. A plethora of surprises // Plant Physiol. 2001. V. 125. P. 81–84. DOI:10.1104/pp.125.1.81
  16. Lu Z.Huang M.Ge D.-P.Yang Y.-H.Cai X.-N.Qin P.She J.-M. Effect of brassinolide on callus growth and regeneration in Spartina patens (Poaceae) // Plant CellTiss Organ Cult. 2003. V. 73. P. 87–89. DOI:10.1023/A:1022665210113
  17. Murashige Т.Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures // Physiol Plant. 1962. V. 15. P. 473–497. DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
  18. Phytohormones and Abiotic Stress Tolerance in Plants / Eds. N.A. KhanR. NazarN. IqbalN.A. Anjum. Springer-Verlag Berlin Heidelberg2012. 306 p. DOI:10.1007/978-3-642-25829-9
  19. Robert H. S.Khaitova L. C.Mroue S.Benková E. The importance of localized auxin production for morphogenesis of reproductive organs and embryos in Arabidopsis // J. Exp. Bot. 2015. V. 66. P. 5029–5042. DOI:10.1093/jxb/erv256
  20. Romanov G. A. How do cytokinins affect the cell? // Rus J Plant Physiol. 2009. V. 56. P. 268–290. DOI:10.1134/S1021443709020174
  21. Seldimirova O.A.Bezrukova M.V.Galin I.R.Lubyanova A.R.Shakirova F.M.Kruglova N.N. 24-epibrassinolide effects on in vitro callus tissue formationgrowthand regeneration in wheat varieties with contrasting drought resistance // Russ. J. Plant Physiol. 2017. V. 64. P. 919–929. DOI:10.1134/S1021443717060085
  22. Shirokikh I.G.Bakulina A.V.Batalova G.A. Induction of morphogenesis in barley callus culture // Russ. Agricult. Sci. 2014. V. 40. P. 237–241. DOI:10.3103/S1068367414040144
  23. Su Y.-H.Liu Y.-B.Zhang X.-S. Auxin–cytokinin interaction regulates meristem development // Mol. Plant. 2011. V. 4. P. 616–625. DOI:10.1093/mp/ssr007
  24. Su Y.H.Su Y.X.Liu Y.G.Zhang X.S. Abscisic acid is required for somatic embryo initiation through mediating spatial auxin response in Arabidopsis // Plant Growth Regul. 2013. V. 69. P. 167–176. DOI:10.1007/s10725-012-9759-2
  25. Tanasienko I.V.Yemets A.I.Blume Ya.B. Estimation of the callus formation and regeneration efficiency in spring varieties of barley zoned in Ukraine // Cytol. Genet. 2009. V. 43. P. 230–236. DOI:10.3103/S0095452709040021
  26. Veselov D.S.Kudoyarova G.R.Kudryakova N.V.Kusnetsov V.V. Role of cytokinins in stress resistance of plants // Russ. J. Plant Physiol. 2017. V. 64. P. 15–27. DOI:10.1134/S1021443717010162
  27. Vriet C.Russinova E.Reuzeau C. Boosting crop yields with plant steroids // Plant Cell. 2012. V. 24. P. 842–857. DOI:10.1105/tpc.111.094912
  28. Vysotskaya L.B.Aval’baev A.M.Yuldashev R.A.Shakirova F.M.Veselov S.Yu.Kudoyarova G.R. Regulation of cytokinin oxidase activity as a factor affecting the content of cytokinins // Russ. J. Plant Physiol. 2010. V. 57. P. 494–500. DOI:10.1134/S1021443710040060
  29. Yuldashev R.Avalbaev A.Bezrukova M.Vysotskaya L.Khripach V.Shakirova F. Cytokinin oxidase is involved in the regulation of cytokinin content by 24-epibrassinolide in wheat seedlings // Plant Physiol. Biochem. 2012. V. 55. P. 1–6. DOI:10.1016/j.plaphy.2012.03.004
Скачать pdf
наверх
eISSN: 2221-6197 DOI: 10.31301/2221-6197