Индукция органогенеза и получение протопластов Saintpaulia ionantha H.Wendl
26.12.2024
Авторы:
Название:
Индукция органогенеза и получение протопластов Saintpaulia ionantha H.Wendl
Страницы:
342-350
Saintpaulia ionantha H.Wendl – сенполия или фиалка узамбарская, благодаря своим небольшим размерам, неприхотливости, высокой декоративности и способности к круглогодичному цветению является одним из самых популярных комнатных растений в мире. Актуальным является разработка технологий микроклонального размножения сенполий, с помощью которых можно получать гораздо большее число саженцев, чем при использовании стандартного вегетативного размножения. Нами был апробирован метод получения регенерантов на листовых эксплантах сенполии сорта ЭТ-Пенетта собственной селекции с использованием питательной среды Мурасиге-Скуга с регуляторами роста 6-бензиламинопурином (0,5 мг/л) и нафтилуксусной кислотой (0,1 мг/л). Из двух листьев было получено около 400 молодых растений, что на порядок больше, чем при использовании обычного вегетативного размножения. В селекции сенполий также часто используют гибридные формы, но для некоторых сортов их по разным причинам не удается получить. Одним из способов преодоления этого барьера является использование технологий соматической гибридизации. Для этого необходимо получать жизнеспособные протопласты. Исходя из этого нами были апробированы три метода для получения протопластов сенполии, из которых наилучшим оказался подход с использованием плазмолитического буфера с большей концентрацией маннитола (0,7 М) и среднее время по ферментативной обработке фрагментов листьев (8 ч) при уменьшенной концентрации мацерозима (0,5%).
- Бутенко Р.Г. Биология высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: учебное пособие. М.: ФБК Пресс. 1999. 160 с 2. Вечернина Н.А., Таварткиладзе О.К., Дурникин Д.А., Смашных К.А., Горина М.К. Микроразмножение растений фиалки Saintpaulia ionantha (s. Kewensis c.b. klarke) // В сборнике: Биотехнология и общество в XXI веке. Сборник статей Международной научно-практической конференции. 2015. С. 329–333. 3. Воронина А.В., Вишнякова А.В., Комахин Р.А., Монахос С.Г. Основы биотехнологии садовых культур: учебное пособие. Москва. 2023. 139 с.: ил. 4. Глеба Ю.Ю., Мяшкене И.В. Гибридизация соматических клеток и возможности анализа и манипуляций генами цитоплазмы высших растений // Biopolymers and Cell. 1986. Т. 2. № 1. С. 5–11. 5. Егорова А. А., Иванова К. А., Герасимова С. В. Изоляция протопластов Solanum tuberosum и Solanum verrucosum и их PEG‑опосредованная трансформация // Методы редактирования генов и геномов. Рос. акад. наук, Сиб. отд-ние, ФИЦ Ин-т цитологии и генетики. Новосибирск: Издательство СО РАН. 2020. С. 89–99 6. Зарипова А.А., Мухаметвафина А.А., Уразбахтина К.А., Шигапова А.И., Ахметова А.Ш., Шигапов З.Х. Клональное микроразмножение глоксинии гибридной // Экобиотех. 2019. Т. 2. № 4. С. 533–539. doi:10.31163/2618-964X-2019-2-4-533-539 7. Иванова Н.Н., Митрофанова И.В., Митрофанова О.В. Методические основы клонального микроразмножения некоторых декоративных культур // Сборник научных трудов Государственного Никитского ботанического сада. 2014. Т. 138. С. 57–101. 8. Котовщикова Н.И. К вопросу культивирования сенполий (биология и экология) // Труды Никитского ботанического сада. 1976. Т. 68. С. 98-107. 9. Кулуев Б.Р., Князев А.В., Сафиуллина М.Г., Чемерис А.В. Влияние конститутивной экспрессии гена ARGOS-LIKE на размеры клеток и органов трансгенных растений табака // Генетика. 2013. Т.49. №5. С. 587–594. doi:10.7868/S0016675813040073 10. Кулуев Б.Р., Круглова Н.Н., Зарипова А.А., Фархутдинов Р.Г. Основы биотехнологии растений: учебное пособие / по ред. Р.Г. Фархутдинова. Уфа: РИЦ БашГУ. 2017. 244 с. 11. Сторк К., Сторк Дж. Вы сумеете вырастить фиалки! М.: «Дом Фиалки» 2013. 352 с.: ил. 12. Тимофеева О.А., Невмержицкая Ю.Ю. Клональное микроразмножение растений: Учебно-методическое пособие. Казань: Казанский университет. 2012. 56 с. 13. Турпанова Р.М. Киргизова И.В. Оптимизация условий для выделения и культивирования протопластов люцерны желтой (Medicago falcata) (геология и экология) // Известия КГТУ. 2014. С. 379–381. 14. Botelho F.B.S., Rodrigues C.S., Bruzi A.T. Ornamental plant breeding // Ornamental Horticulture. 2015. V. 21(1). P. 9-16. doi:10.14295/rbho.v21i1.770 15. Ghasemi Y., Nematzadeh G.A., Omran V. G., Dehestani A., Hosseini S. The effects of explant type and phytohormones on African violet (Saintpaulia ionantha) micropropagation efficiency // Biharean Biologist. 2012. V.6. No. 2. P. 73–76. 16. Hoshino Y., Nakano M., Mii M. Plant regeneration from cell suspension-derived protoplasts of Saintpaulia ionantha Wendl // Plant Cell Reports. 1995. V. 14. P. 341–344. doi:10.1007/BF00238593 17. Kang H.H., Naing A.H., Kim C.K. Protoplast isolation and shoot regeneration from protoplast-derived callus of Petunia hybrida Cv. Mirage Rose // Biology. 2020. 9(8): 228. doi:10.3390/biology9080228 18. Rajabi A., Fahmideh L., Keykhasaber M., Omran V.G. Genetic engineering of novel yellow color african violet (Saintpaulia ionantha) produced by accumulation of Aureusidin 6-O-glucoside // Biological Procedures Online. 2022. V. 24(1). 3. doi:10.1186/s12575-022-00164-0 19. Shukla M., Sullivan J.A., Jain S.M., Murch S.J., Saxena P.K. Micropropagation of African Violet (Saintpaulia ionantha Wendl.). In: Lambardi, M., Ozudogru, E., Jain, S. (eds) Protocols for Micropropagation of Selected Economically-Important Horticultural Plants. Methods in Molecular Biology. 2012. V. 994. Humana Press, Totowa, NJ. doi:10.1007/978-1-62703-074-8_22 20. Winkelmann T., Grunewaldt J. Analysis of protoplast‐derived plants of Saintpaulia ionantha H. Wendl // Plant Breeding. 1995. V. 114(4). P. 346–350. doi:10.1111/j.1439-0523.1995.tb01247.x 21. Winkelmann T., Grunewaldt J. Genotypic variability for protoplast regeneration in Saintpaulia ionantha (H. Wendl.) // Plant Cell Reports. 1995a. V. 14(11) P. 704-707. doi:10.1007/BF00232651