Biomics

В работе обсуждается терминология, связанная с обезвреживанием и утилизацией шлам-лигнина Байкальского целлюлозно-бумажного комбината и других органических промышленных отходов с использованием процесса компостирования. Приводится терминология соответствующих ГОСТ, а также принятая зарубежными общественными, государственными и профессиональными организациями в отношении определений «компостирование», «компост», «зрелость» («maturity») и «стабильность» («stability»). Показано наличие противоречий между разными ГОСТ в определении условий компостирования (аэробные или анаэробные), а также несоответствие определения компост с названиями таких продуктов, как торфоперегнойный, торфосидератный, навозно-земляной и другие компосты, отсутствие в официальных документах Российской Федерации определения зрелости и стабильности компоста. Сделан вывод о необходимости принятия единых определений указанных терминов, а также разработки методов оценки зрелости и стабильности компостов.

органические промышленные отходы, шлам-лигнин, компост, компостирование, зрелость и стабильность компоста, термины и определения

1. Bednarczyk D., Aviv-Sharon E., Savidor A., Levin Y., Charuvi D. Influence of short-term exposure to high light on photosynthesis and proteins involved in photo-protective processes in tomato leaves // Environmental and Experimental Botany. 2020. V. 179, 104198. doi: 10.1016/j.envexpbot.2020.104198
2. Fatma M., Iqbal N., Sehar Z., Alyemeni M.N., Kaushik P., Khan N.A., Ahmad P. Methyl jasmonate protects the PS II system by maintaining the stability of chloroplast D1 protein and accelerating enzymatic antioxidants in heat-stressed wheat plants // Antioxidants. 2021. V. 10. 1216. doi: 10.3390/antiox10081216
3. Ghosh D., Mohapatra S., DograV. Improving photosynthetic efficiency by modulating non-photochemical quenching // Trends Plant Sci. 2023. V. 28(3). P. 264-266. doi: 10.1016/j.tplants.2022.12.016
4. Goltsev V.N., Kalaji M.H., Kouzmanova M.A., Allakhverdiev S.I. Variable and delayed chlorophyll a fluorescence – basics and application in plant sciences. Moscow–Izshevsk: Institute of Computer Sciences. 2014. 220 pp.
5. Gururani M.A., Venkatesh J., Tran L.S.P. Regulation of photosynthesis during abiotic stress-induced photoinhibition // Molecular Plant. 2015. V. 8. P. 1304-1320. doi: 10.1016/j.molp.2015.05.005
6. Javadipour Z., Balouchi H., Movahhedi Dehnavi M., Yadavi A. Physiological responses of bread wheat (Triticum aestivum) cultivars to drought stress and exogenous methyl jasmonate // J. Plant Growth Regul. 2022. V. 41. P. 3433–3448. doi: 10.1007/s00344-021-10525-w
7. Li L.I., Pei-pol G.U.O., Baumz M., Grando S., Ceccarelli S. Evaluation of chlorophyll content and fluorescence parameters as indicators of drought tolerance in barley // ASC. 2006. V. 5(10). P. 751-757. doi: 1016/S1671-2927(06)60120-X
8. Maxwell K., Johnson G.N. Chlorophyll fluorescence—a practical guide // J.Exp.Bot. 2000. V. 51(345). P. 659-668. doi: 1093/jexbot/51.345.659
9. Muhammad I., Shalmani A., Ali M., Yang Q.H., Ahmad H., Li F.B. Mechanisms regulating the dynamics of photosynthesis under abiotic stresses // Front. Plant Sci. 2021. V. 11, 615942. doi: 10.3389/fpls.2020.615942
10. Pompelli M.F., Arrieta D.V., Rodríguez Y.Y.P. et al. Can chlorophyll a fluorescence and photobleaching be a stress signal under abiotic stress in Vigna unguiculata? // Sustainability. 2022. V. 14. 15503. doi: 10.3390/su142315503
11. Qiu X., Xu Y., Xiong B., Dai L., Huang S., Dong T., Sun , Liao L., Deng Q., Wang X., Zhu J., Wang Z. Effects of exogenous methyl jasmonate on the synthesis of endogenous jasmonates and the regulation of photosynthesis in citrus // Physiol. Plantarum. 2020. V. 170. P. 398–414. doi: 10.1111/ppl.13170
12. Sommer S.G., Han E., Li X., Rosenqvist E., Liu F. The chlorophyll fluorescence parameter Fv/Fm correlates with loss of grain yield after severe drought in three wheat genotypes grown at two CO₂ concentrations // Plants. 2023. V. 12. 436. doi: 10.3390/plants12030436
13. Wang X., Li Q., Xie J., Huang M., Cai J., Zhou Q., Dai, Jiang D. Abscisic acid and jasmonic acid are involved in drought priming-induced tolerance to drought in wheat // Crop J. 2021. V. 9(1). P. 120-132. doi: 10.1016/j.cj.2020.06.002