Biomics

Pseudomonas spр. обладают большим потенциалом как ризосферные бактерии, стимулирующие рост растений (PGPR), а также имеющие микостатическую активностью по отношению к фитопатогенным грибам, поэтому данный вид микроорганизмов представляет собой большой интерес для создания биопрепаратов с высокой эффективностью для разных видов растений. Целью данной работы было исследование штаммов Pseudomonas sp. с фунгистатической активностью сохранять способность к подавлению роста фитопатогенных штаммов грибов Microdochium nivale ВКМ 3106, Fusarium graminearum ВКМ 1668, F. culmorum ВКМ 844 и Bipolaris sorokiniana после длительной заморозки. В результате штамм P. chlororaphis Елена показал ингибирование Microdochium nivale ВКМ 3106 на 41,87 %, P. chlororaphis ВКПМ В-9444 на 35,93 %, F. culmorum ВКМ 844 на 78,68 и 72,66 %, соответственно, F. graminearum ВКМ 1668 на 47,31 и 33,39 %, соответственно, B. sorokiniana на 86,6 и 78,15 %, соответственно. Таким образом, штамм Елена показал хорошую антагонистическую активность даже после долгой глубокой заморозки, штамм В-9444 немного уступал по своим показателям.

Pseudomonas spр., PGPR, Fusarium graminearum, F. culmorum, Microdochium nivale, Bipolaris sorokiniana

1. Бакаева М.Д., Смолова О.С., Логинов О.Н. Использвание            для        биорекультивации микроорганизмов – деструкторов углеводородов рода Pseudomonas с микотической активностью // Биотехнология. 2014. T. 30(6). С. 60-70
2. Биккинина А.Г., Логинов О.Н., Силищев Н.Н., Бакаева М.Д., Галимзянова Н.Ф. Повышение эффективности процесса биоремедиации отработанной отбеливающей земли, загрязненной углеводородами, при совместном использовании комплекса биопрепаратов Ленойл и Азолен // Биотехнология. 2006. № 5. С. 57-62
3. Киреева Н.А., Рафикова Г.Ф., Григориади А.С., Галимзянова Н.Ф., Логинов О.Н. Влияние биопрепарата Азолен на комплекс микромицетов нефтезагрязненной серой лесной почвы // Микология и фитопатология. 2009. Т.43 (2). С. 142.
4. Коршунова Т.Ю., Бакаева М.Д., Кузина Е.В., Рафикова Г.Ф., Четвериков С.П., Четверикова Д.В., Логинов О.Н. Роль бактерий рода Pseudomonas в устойчивом развитии агросистем и защите окружающей среды (обзор) // Прикл. биохимия и микробиология. 2021. Т. 57(3). С. 211–227. DOI: 10.31857/S0555109921030089
5. Платонова Ю.В., Сурин Н.А. География грибов рода Fusarium (литературный обзор) // Фундаментальные исследования. 2004. № 4. С. 95-97
6. Чубукова О.В., Хакимова Л.Р., Акимова Е.С., Вершинина З.Р. Филогения и свойства новых штаммов Pseudomonas sp. из ризосферы бобовых растений Южного Урала // Микробиология. 2022. T. 91(5). C. 537-546. DOI: 10.31857/S0026365622100196
7. Abiodun Ajulo A., Asobia P.C., Silva de Oliveira R., de Andrade Bezerra G., Rosa Goncalves A., de Filippi MCC. Screening bacterial isolates for biocontrol of sheath blight in rice plants // J Environ Sci Health B. 2023. V. 58(5). P 426-435. DOI: 10.1080/03601234.2023.2220644
8. Adeniji A.A., Babalola O.O. Tackling maize fusariosis: in search of Fusarium graminearum biosuppressors // Arch Microbiol. 2018. V. 200(8). P. 1239-1255. DOI: 10.1007/s00203-018-1542-y
9. Al-Sadi AM. Bipolaris sorokiniana – Induced Black Point, Common Root Rot, and Spot Blotch Diseases of Wheat: A Review // Front Cell Infect Microbiol. 2021. V.11. 584899 DOI: 10.3389/fcimb.2021.584899
10. Castaldi S., Masi M., Sautua F., Cimmino A., Isticato R., Carmona M., Tuzi A., Evidente A. Pseudomonas fluorescens Showing Antifungal Activity against Macrophomina phaseolina, a Severe Pathogenic Fungus of Soybean, Produces Phenazine as the Main Active Metabolite // Biomolecules. 2021. V.11. 1728. DOI: 10.3390/biom11111728
11. Chen W, Kastner C, Nowara D, Oliveira-Garcia E, Rutten T, Zhao Y, Deising HB, Kumlehn J, Schweizer Host-induced silencing of Fusarium culmorum genes protects wheat from infection // J Exp Bot. 2016. V. 67(17). P. 4979-4991. DOI: 10.1093/jxb/erw263
12. Czembor E, Stępień Ł, Waśkiewicz A. Effect of environmental factors on Fusarium species and associated mycotoxins in maize grain grown in Poland // PLoS One. 2015. V. 10(7). DOI: 10.1371/journal.pone.0133644
13. Dwivedi S.L., Lammerts van Bueren E.T., Ceccarelli S., Grando S., Upadhyaya H.D., Ortiz R. Diversifying Food Systems in the Pursuit of Sustainable Food Production and Healthy Diets // Trends Plant Sci. 2017.                            V.22.                      P.             842-856.            DOI: 10.1016/j.tplants.2017.06.011
14. Hazell P., Wood S. Drivers of change in global agriculture // Philos. Trans. R. Soc. B Biol. Sci. 2007. V. 363(1491). P. 495-515. DOI: 10.1098/rstb.2007.2166
15. Martinez-Rodriguez Jdel C, De la Mora-Amutio M, Plascencia-Correa LA, Audelo-Regalado E, Guardado FR, Hernandez-Sanchez E, Pena-Ramirez YJ, Escalante A, Beltran-Garcia MJ, Ogura T. Cultivable endophytic bacteria from leaf bases of Agave tequilana and their role as plant growth promoters // Braz J Microbiol. 2015. V. 45(4). P. 1333-1339. DOI: 10.1590/s151783822014000400025
16. Lahlali R., Ezrari S., Radouane N., Kenfaoui J., Esmaeel Q., El Hamss H., Belabess Z., Barka E.A. Biological Control of Plant Pathogens: A Global Perspective // Microorganisms. 2022. V. 10(3). 596. DOI: 10.3390/microorganisms10030596.
17. Laslo E, Gyorgy E, Mara G, Tamas E, Abraham B, Lanyi S. Screening of plant growth promoting rhizobacteria as potential microbial inoculants // Crop Prot. 2012. V.40. P. 43-48. doi: 10.1016/j.cropro.2012.05.002
18. Özer G, Erper İ, Yıldız Ş, Bozoğlu T, Zholdoshbekova S, Alkan M, Tekin F, Uulu TE, İmren M, Dababat AA, Derviş S. Fungal Pathogens Associated with Crown and Root Rot in Wheat-Growing Areas of Northern Kyrgyzstan // J Fungi (Basel). 2023. V. 9(1). P. 124. DOI: 10.3390/jof9010124
19. Park G.K., Lim J.H, Kim S.D., Shim S.H. Elucidation of Antifungal Metabolites Produced by Pseudomonas aurantiaca IB5-10 with Broad-Spectrum Antifungal Activity // J. Microbiol. Biotechnol. 2012. V. 22(3). P. 326-330. DOI:10.4014/jmb.1106.06042
20. Perez-Montano F., Alias-Villegas C., Bellogin R.A., del Cerro P., Espuny M.R., Jimenez-Guerrero I., Lopez-Baena F.J., Ollero F.J., Cubo T. Plant growth promotion in cereal and leguminous agricultural important plants: from microorganism capacities to crop production // Microbiol Res. 2014. V.169(5-6). P. 325- 336. DOI: 10.1016/j.micres.2013.09.011
21. Salvatore M.M.; Andolfi A. Phytopathogenic Fungi and Toxicity // Toxins. 2021. V. 13(10). 689. DOI:10.3390/toxins13100689
22. Shaikh S.S., Patel P.R., Patel S.S., Nikam S.D., Rane T.U., Sayyed R.Z. Production of biocontrol traits by banana field fluorescent Pseudomonads and comparison with chemical fungicide // Indian J. Exp. Biol. 2014. V.52. P.917–920.
23. Sindhu S.S., Sehrawat A., Sharma R., Dahiya A. Biopesticides: Use of Rhizosphere Bacteria for Biological Control of Plant Pathogens // Def. Life Sci. J. 2016. V.1(2). P.135–148. DOI: 10.14429/dlsj.1.10747
24. Summerell B.A., Leslie J.F. Fifty years of Fusarium: how could nine species have ever been enough? // Fungal Divers. 2011. V. 50(1). P. 135–144. DOI:10.1007/s13225-011-0132-y
25. Tsers I, Marenina E, Meshcherov A, Petrova O, Gogoleva O, Tkachenko A, Gogoleva N, Gogolev Y, Potapenko E, Muraeva O, Ponomareva M, Korzun V, Gorshkov V. First genome-scale insights into the virulence of the snow mold causal fungus Microdochium nivale // IMA Fungus. 2023. V. 14(1). DOI: 10.1186/s43008-022-00107-0
26. Umer M., Mubeen M., Iftikhar Y., Shad M.A., Usman H.M., Sohail M.A., Atiq M.N., Abbas A., Ateeq Role of Rhizobacteria on Plants Growth and Biological Control of Plant Diseases: A Review // Plant Prot. 2021. V.5. P.59–73. DOI: 10.33804/pp.005.01.35