Получение трансформированных геном rapA1 растений томатов
06.08.2021
Авторы:
Название:
Получение трансформированных геном rapA1 растений томатов
Страницы:
153-158
Бактериальный агглютинин RapA1 участвует в прикреплении ризобий к корням растений-макросимбионтов. Получение трансгенных сельскохозяйственных культур, вырабатывающих данный белок непосредственно на поверхности корней, актуально для изучения симбиоза этих растений с ризобиями. Томаты (Lycopersicon lycopersicum L.) сорта Грунтовый Грибовский 1180 были трансформированы геном rapA1 с помощью штамма Agrobacterium tumefaciens AGL0, несущего вектор pCambia1301LPSLRapA1. Эффективность разработанного метода трансформации составила около 5%.
- Вершинина З.Р., Нигматуллина Л.Р., Лавина А.М., Баймиев Ал.Х. Искусственные симбиотические ассоциации томата, трансгенного по гену лектина PSL // Вестник Оренбургского государственного университета. 2014. № 13 (174). С. 13-15. 2. Вершинина З.Р., Нигматуллина Л.Р., Лавина А.М., Баймиев Ал.Х. Получение растений табака, трансгенных по гену бактериального адгезина RapA1 // Статья в сборнике: Трансгенные растения: технологии создания, биологические свойства, применение, биобезопасность. 2016. С. 23-26. 3. Вершинина З.Р., Чубукова О.В., Никоноров Ю.М., Хакимова Л.Р., Лавина А.М., Каримова Л.Р., Баймиев Ан.Х., Баймиев Ал.Х. Влияние сверхэкспрессии гена rosR на образование биопленок бактериями Rhizobium leguminosarum // Микробиология. 2021. Т. 90(2). С. 19-200. DOI:10.31857/S0026365621020154 4. Нигматуллина Л.Р., Лавина А.М., Вершинина З.Р., Баймиев Ал.Х. Вклад бактериального адгезина RapA1 в эффективность формирования симбиоза Rhizobium leguminosarum с растениями фасоли // Микробиология. 2015. №6 (84). С. 705–711. DOI:10.7868/S0026365615060099 5. Хакимова Л.Р., Лавина А.М., Вершинина З.Р., Баймиев Ал.Х. Использование штаммов-продуцентов адгезина RapA1 из Rhizobium leguminosarum для создания бинарных биоудобрений // Прикладная биохимия и микробиология. 2017. Т. 53(4). С. 400-405. DOI:10.7868/S0555109917040080 6. Халилуев М.Р., Харченко П.Н., Долгов С.В. Разработка системы регенерации и изучение трансформационного потенциала томата промышленного сорта // Докл. РАСХН. 2010. № 3. С. 22-26. 7. Ausmees N., Jacobsson K., Lindberg M. A unipolarly located, cell-surface-associated agglutinin RapA belongs to a family of Rhizobium-adhering proteins (Rap) in Rhizobium leguminosarum bv. trifolii // Microbiol. 2001. V. 147. P. 549–559. doi:10.1099/00221287-147-3-549 8. Chabot R., Antoun H., Kloepper J.W., Beauchamp C.J. Root Colonization of maize and lettuce by bioluminescent Rhizobium leguminosarum biovar phaseoli // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V. 62. P. 2767–2772. doi:10.1128/aem.62.8.2767-2772.1996 9. Diaz C.L., Van Spronsen P.C., Bakhuizen R., Logman G.J.J., Lugtenberg B.J.J., Kijne J.W. Correlation between infection by Rhizobium leguminosarum and lectin on the surface of Pisum sativum L. roots // Planta. 1986. V. 168. P. 350–358. 10. Jefferson R.A. Assaying chimeric genes in plants: The gus gene fusion system // Plant Mol. Biol. Rep. 1987. V. 5. P.387–405. 11. McCormick S., Niedermeyer J., Fry J., Barnason A., Horsch R., Fraley R. Leaf disc transformation of cultivated tomato (Lycopersicon esculentum) using Agrobacterium tumefaciens // Plant Cell Rep. 1986. V. 15. N. 2. P. 81-84. 12. Mongiardini E.J., Ausmees N., Perez-Gimenez J. The rhizobial adhesion protein RapA1 is involved inadsorption of rhizobia to plant roots but not in nodulation // FEMS Microbiol. Ecol. 2008. V.65. P. 279–288. doi:10.1111/j.1574-6941.2008.00467.x 13. Mongiardini E. J., Perez-gimenez J., Althabegoiti M. J., Covelli J., Quelas J. I., Lopez-garcia S. L., Lodeiro A. Overproduction of the rhizobial adhesin RapA1 increases competitiveness for nodulation // Soil Biol. Biochem. 2009. V.41. P.2017-2020. doi:10.1016/j.soilbio.2009.07.016 14. Ramey B.E., Koutsoudis M., von Bodman S.B., Fuqua C. Biofilm formation in plant–microbe associations // Curr. Opin. Microbiol. 2004. V.7. P. 602–609. doi:10.1016/j.mib.2004.10.014 15. Somers E., Vanderleyden J., Srinivasan M. Rhizosphere bacterial signalling: a love parade beneath our feet // Crit. Rev. Microbiol. 2004. V.30. P. 205–240. doi:10.1080/10408410490468786 16. Varlamova N. V., Dolgikh Y. I., Blinkov A. O., Baranova E. N., Khaliluev M. R. Effects of different β-lactam antibiotics on indirect tomato (Solanum lycopersicum L.) shoot organogenesis and Agrobacterium tumefaciens growth inhibition in vitro // Antibiotics (Basel) 2021. V.10(6): 660. doi:10.3390/antibiotics10060660