ГМО запретить невозможно разрешить!
24.04.2020
Авторы:
Название:
ГМО запретить невозможно разрешить!
Страницы:
80-120
Отсутствие смысловой запятой в названии данной публикации «ГМО запретить невозможно разрешить!» не случайно, поскольку нам хотелось бы, чтобы сами читатели после прочтения всей статьи поставили ее в правильное место. Для этого предоставлены убедительные доказательства надуманности выдвигаемых против ГМО обвинений, граничащих с фальсификациями. Приведены аргументы, свидетельствующие, что плейотропное действие генов имеет место не только в ГМ-растениях, а проявляется еще сильнее в гибридах и в сортах, полученных с помощью мутагенной селекции при радиационном или химическом воздействиях, вызывающих огромное количество мутаций с непредсказуемыми последствиями. Показана роль средств массовой информации в раздувании истерии по отношению к ГМ-растениям. Продемонстрировано отношение отдельных юристов к проблеме ГМО. Показана принципиальная невозможность количественной детекции ГМО/ГМИ с необходимой точностью в сельскохозяйственной продукции и в продуктах питания, из-за чего попытки такого контроля превращается в профанацию и ненужную трату средств. При этом новое поколение ГМО, представленное растениями с редактированными геномами представляют собой следующий этап направленного улучшения сельскохозяйственных, декоративных и прочих культур, которые лишены некоторых недостатков, присущих «старым» формам.
- Анисимов А. П., Мирина Н. В. Актуальные проблемы обеспечения продовольственной безопасности в России в контексте глобальных вызовов современности //Аграрное и земельное право. 2019. №. 9. С. 34-38. 2. Баймиев Ан.Х., Кулуев Б.Р., Вершинина З.Р. Князев А.В., Чемерис Д.А., Рожнова Н.А., Геращенков Г.А., Михайлова Е.В., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. CRISPR/Cas редактирование геномов (растений) и общество // Биомика. 2017. Т.9. С.183-202. 3. Барабанова Л.В., Ковтун Е.В. Изучение мутагенных эффектов генетически модифицированной сои у дрозофилы и мыши // Экологическая генетика. 2015. Т.13(2). С. 136-141. DOI:10.17816/ecogen132136-141 4. Богатырева Н.В. Применение геномных технологий в растениеводстве как объект административно-правового регулирования // Материалы межвузовской научной конференции на базе кафедры административного и финансового права Юридического института Российского университета дружбы народов. Российский университет дружбы народов. 2019. С. 83-90. 5. Бурлаковский М.С., Емельянов В.В., Лутова Л.А. Растения – продуценты рекомбинантных цитокинов (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2016. Т.52(2). С. 149-167. DOI:10.7868/S0555109916020033 6. Вершинина З.Р., Кулуев Б.Р., Геращенков Г.А., Князев А.В., Гумерова Г.Р., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Эволюция методов редактирования геномов // Биомика. 2017. Т.9. С. 245-270. 7. Гагарина, И. Н., Гнеушева, И. А., Горькова, И. В., Костромичева, Е. В., Павловская, Н. Е., Солохина, И. Ю. Антиоксидантная система у генетически модифицированной сои в процессе прорастания семян //Вестник ИрГСХА. 2018. № 88. С. 13. 8. Гарафутдинов Р.Р., Баймиев Ан.Х., Малеев Г.В., Алексеев Я.И., Зубов В.В., Чемерис Д.А., Кирьянова О.Ю., Губайдуллин И.М., Матниязов Р.Т., Сахабутдинова А.Р., Никоноров Ю.М., Кулуев Б.Р., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Разнообразие праймеров для ПЦР и принципы их подбора // Биомика. 2019. Т.11(1). С. 23 – 70. DOI:10.31301/2221-6197.bmcs.2019-04 9. Геращенков Г.А, Рожнова Н.А, Кулуев Б.Р., Кирьянова О.Ю., Гумерова Г.Р., Князев А.В., Вершинина З.Р., Михайлова Е.В., Чемерис Д.А., Матниязов Р.Т., Баймиев Ан.Х., Губайдуллин И.М., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Дизайн РНК-гидов для CRISPR/CAS редактирования геномов растений // Молекулярная биология. 2020. Т.54(1). С. 29-50. DOI:10.1134/S0026898420010061 10. Гималов Ф.Р. Чемерис А.В., Вахитов В.А. О восприятии растением холодового сигнала // Успехи современной биологии. 2004. Т. 124(2). С. 185-196. 11. Гнеушева И.А., Павловская Н.Е., Лушников А.В., Солохина И.Ю. Влияние ГМО-сои на функциональное состояние органокомплекса белых лабораторных мышей // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2019. № 5. С. 58-66. 12. Горячева О. Н., Горячева С. А. Влияние медиа на отношение населения к ГМО // MEDIA Образование: векторы интеграции в цифровое пространство. 2019. С. 438-442. 13. Дейкин, А. В., Кузнецова, В. Н., Кирикович, Ю. К., Коваленко, Д. В., Солдатов, В. О. ГМО регулирование: Белоруссия, БРИКС, ЕС, США // Азимут научных исследований: экономика и управление. 2019. Т. 8(4). С. 141-145. 14. Закирова, Г. Ш., Папуниди, К. Х., Кадиков, И. Р., Семёнов, Э. И. Влияние рационов с содержанием генетически модифицированной сои на организм животных // Ветеринарный врач. 2019. № 2. 15. Криштафович Д. В., Криштафович В. И. Исследование отношения потребителей московского региона к проблеме использования генно-модифицированных организмов при производстве пищевых продуктов // Фундаментальные и прикладные исследования кооперативного сектора экономики. 2018. № 1. С. 101-107. 16. Кулуев Б.Р., Геращенков Г.А., Рожнова Н.А., Баймиев Ан.Х., Вершинина З.Р., Князев А.В., Матниязов Р.Т., Гумерова Г.Р., Михайлова Е.В., Никоноров Ю.М., Чемерис Д.А., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. CRISPR/Cas редактирование геномов растений // Биомика. 2017. Т.9. С.155-182. 17. Кулуев Б.Р., Князев А.В., Чемерис А.В. Активность промоторов вируса мозаики георгина и вируса кольцевой гравировки гвоздики в протопластах и трансгенных растениях табака // Физиология растений. 2008. Т.55(5). С. 763-770. 18. Кулуев Б.Р., Гумерова Г.Р., Михайлова Е.В., Геращенков Г.А., Рожнова Н.А., Вершинина З.Р., Князев А.В., Матниязов Р.Т., Баймиев Ан.Х., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Доставка CRISPR/CAS-компонентов в клетки высших растений для редактирования их геномов // Физиология растений. 2019. Т. 66(5). С. 339-353. DOI:10.1134/S0015330319050117 19. Кулуев Б.Р., Кирьянова О.Ю., Геращенков Г.А., Рожнова Н.А., Гумерова Г.Р., Вершинина З.Р., Матниязов Р.Т., Ахметзянова Л.У., Князев А.В., Михайлова Е.В., Гарафутдинов Р.Р., Баймиев Ан.Х., Губайдуллин И.М., Баймиев Ал.Х., Чемерис А.В. Некоторые новшества в CRISPR/Cas геномном редактировании и в смежных областях // Биомика. 2019a. Т.11(3). С. 315-343. DOI:10.31301/2221-6197.bmcs.2019-27 20. Кулуев Б.Р., Князев А.В., Лебедев Я.П., Ильясова А.А., Чемерис А.В. Конструирование гибридных промоторов каулимовирусов и анализ их активности в трансгенных растениях // Физиология растений. 2010. T. 57(4). C. 623-632. 21. Кулуев Б.Р., Чемерис А.В. Амплификация и клонирование промоторов вируса мозаики георгина и вируса кольцевой гравировки гвоздики // Генетика. 2007. Т. 43(12). С. 1682-1684. 22. Магданов Э.Г., Чемерис Д.А., Чемерис А.В. Современное приборное оснащение количественной и цифровой ПЦР // Биомика. 2011. Т. 1(1). С. 15-60. 23. Маслакова А.А. Генетически модифицированные организмы. За и против. // Вавиловские чтения. «Наследие Н.И.Вавилова в современной науке». Материалы национальной научно-практической конференции, посвященной деятельности Н.И.Вавилова. Новосиб. гос. аграр. ун-т. Новосибирск, 2019. С.56-60. 24. Матвеева Т.В. Природно-трансгенные растения, как модель для изучения отсроченных экологических рисков возделывания ГМО // Экологическая генетика. 2015. Т.13(2). С. 118-126. DOI:10.17816/ecogen132118-126 25. Матяшова Г.Н., Башкирова И.Г., Батыгин А.С. Генетически модифицированный растительный материал, предназначенный для выпуска в окружающую среду на территории российской федерации: исследование и контроль // Карантин растений. Наука и практика. 2018. № 1 (23). С. 34-38. 26. Мирошниченко Д.Н., Шульга О.А., Тимербаев В.Р., Долгов С.В. Достижения, проблемы и перспективы получения нетрансгенных растений с отредактированным геномом. // Биотехнология. 2019. Т.35(1). С. 3-26. DOI:10.21519/0234-2758-2019-35-1-3-26 27. Панчин А. Сумма биотехнологии. Руководство по борьбе с мифами о генетической модификации растений, животных и людей. М.: 2016. Изд-во «АСТ». 432 С. 28. Петушкова Ю. А. Политические предпосылки формирования нормативной правовой базы в сфере генной инженерии в России и за рубежом // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. ЮА Овчинникова. 2016. Т. 12. № 4. С. 82-90. 29. Печенкина А.А. ГМО: что это такое, применение и перспективы // Сборник статей XXIV международной научно-практической конференции «Advances in Science and Technology». Часть I. М.: «Научно-издательский центр «Актуальность.РФ». 2019. С.48-49. 30. Попова О. В. Этические подходы к нормативному регулированию использования генетически модифицированных организмов: европейский опыт // Международное право. 2019. № 1. С. 28-36. 31. Савельева Н.В., Бурлаковский М.С., Емельянов В.В., Лутова Л.А. Трансгенные растения-продуценты веществ медицинского и ветеринарного назначения // Экологическая генетика. 2015. Т.13(2). С. 77-99. DOI:10.17816/ecogen13277-99 32. Самойлов А.В., Самойлова Е.А. Исследование продовольственного рынка Москвы и Московской области на присутствие продуктов с ГМО // Синергия наук. 2018. № 28. http://synergy-journal.ru/archive/article3162 33. Самсонова А. А. Псевдонаука на телевидении: проблема демонизации ГМО // Актуальные проблемы экранных и интерактивных медиа. 2019. С. 252-260. 34. Соколов А. Ю., Богатырева Н. В. Административно-правовое регулирование применения геномных технологий в сельском хозяйстве Испании // Гуманитарные и юридические исследования. 2019. №. 3. 35. Соколов А.Ю., Богатырева Н.В. Запрет на выращивание трансгенных растений как сдерживающий фактор производства съедобных вакцин. В книге: Право и современные технологии в медицине Отв. ред. А.А. Мохов, О.В. Сушкова. Москва, 2019. С. 273-277. 36. Тихонова Н.Г., Хлесткина Е.К. Генетическое редактирование для улучшения плодовых и ягодных культур. // Садоводство и виноградарство. 2019. № 4. С. 10-15. DOI:10.31676/0235-2591-2019-4-10-15 37. Тропина Д.В., Малова А.Р. Совершенствование правового регулирования в области генной инженерии и биотехнологии в целях обеспечения биологической безопасности Российской Федерации // Право и практика. 2019. № 2. С. 278-283. 38. Тутельян В.А., Гаппаров М.Г., Авреньева Л.И., Гусева Г.В., Жминченко В.М., Кравченко Л.В., Пашорина В.А., Сапрыкин В.П., Селяскин К.Е., Тышко Н.В. Медико-биологическая оценка безопасности генно-инженерно-модифицированной сои линии MON 89788 сообщение 1. Токсиколого-гигиенические исследования // Вопросы питания. 2010. Т. 79(3). С. 4-12. 39. Тышко, Н. В., Жминченко, В. М., Пашорина, В. А., Сапрыкин, В. П., Селяскин, К. Е., Утембаева, Н. Т., Тутельян, В. А. Оценка влияния ГМО растительного происхождения на развитие потомства крыс // Гигиена и санитария. 2011. № 6. С. 73-77. 40. Хлесткина Е.К. Геномное редактирование риса при использовании системы CRISPR. // Биотехнология и селекция растений. 2019. Т.2(1). С. 49-54. doi:10.30901/2658-6266-2019-1-49-54 41. Чемерис А.В. CRISPR/Cas системы (специальный тематический выпуск журнала) // Биомика. 2017. Т.9(3). С. 148-154. 42. Чемерис А.В., Магданов Э.Г., Гарафутдинов Р.Р., Вахитов В.А. Как исключить появление ложно-позитивных результатов при проведении полимеразной цепной реакции // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии. 2012. Т. 8. С. 34-45. 43. Чемерис А.В., Бикбулатова С.М., Чемерис Д.А., Баймиев Ал.Х., Князев А.В., Кулуев Б.Р., Максимов И.В. Надо ли опасаться ГМО? Взгляд несторонних наблюдателей на истерию вокруг // Биомика. 2014. Т.6. С.77-138. 44. Чемерис А.В., Чемерис Д.А., Баймиев Ал.Х., Князев А.В., Кулуев Б.Р., Максимов И.В. Борьба с ГМО как неолысенковщина // Биомика. 2015. Т.7. C. 1-39. 45. Чемерис А.В., Чемерис Д.А., Магданов Э.Г., Гарафутдинов Р.Р., Нагаев Н.Р., Вахитов В.А. Причины ложно-негативной ПЦР и недопущение некоторых из них // Биомика. 2012. Т.4. С.31-47. 46. Чемерис Д.А., Кирьянова О.Ю., Геращенков Г.А., Кулуев Б.Р., Рожнова Н.А., Матниязов Р.Т., Баймиев Ан.Х., Баймиев Ал.Х., Губайдуллин И.М., Чемерис А.В. Биоинформатические ресурсы для CRISPR/Cas редактирования геномов // Биомика. 2017. Т.9. С.203-228. 47. Чемерис Д.А., Кирьянова О.Ю., Губайдуллин И.М., Чемерис А.В. Дизайн праймеров для полимеразной цепной реакции (краткий обзор компьютерных программ и баз данных) // Биомика. 2016. Т. 8. № 3. С. 215-238. 48. Чемерис Д.А., Магданов Э.Г., Машков О.И., Гарафутдинов Р.Р., Чемерис А.В. ПЦР с отложенным (горячим или задержанным) стартом // Биомика. 2011. Т. 2. № 1. С. 1-8. 49. Чумаков М.И., Гусев Ю.С., Богатырева Н.В., Соколов а.Ю. Оценка рисков распространения генетически модифицированной кукурузы с пыльцой при выращивании с нетрансформированными сортами (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2019. Т.54(3). С.426-445. DOI:10.15389/agrobiology.2019.3.426rus 50. Addo-Quaye, C., Tuinstra, M., Carraro, N., Weil, C., Dilkes, B. P. Whole-genome sequence accuracy is improved by replication in a population of mutagenized sorghum // G3: Genes, Genomes, Genetics. 2018. V. 8. No. 3. P. 1079-1094. doi:10.1534/g3.117.300301 51. Ahmad N, Rahman MU, Mukhtar Z, Zafar Y, Zhang B. A critical look on CRISPR-based genome editing in plants. // J Cell Physiol. 2020. V.235(2). P.666-682. doi:10.1002/jcp.29052 52. Akeley, R. V., Mills, W. R., Cunningham, C. E., Watts, J. Lenape: a new potato variety high in solids and chipping quality // American Potato Journal. 1968. V. 45(4). P. 142-145. doi:10.1007/bf02863068 53. Ballari R. V., Martin A. Assessment of DNA degradation induced by thermal and UV radiation processing: Implications for quantification of genetically modified organisms // Food chemistry. 2013. V. 141(3). P. 2130-2136. doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.05.032 54. Bonny, S. Genetically modified herbicide-tolerant crops, weeds, and herbicides: overview and impact // Environmental Management. 2016. V.57(1). P. 31-48. doi:10.1007/s00267-015-0589-7 55. Brookes G., Barfoot P. Environmental impacts of genetically modified (GM) crop use 1996-2016: Impacts on pesticide use and carbon emissions // GM Crops Food. 2018. V.9(3). P.109-139. doi:10.1080/21645698.2018.1476792 56. Burke D.C. There's a long, long trail a-winding: the complexities of GM foods regulation, a cautionary tale from the UK // GM Crops Food. 2012. V.3(1). P.30-39. doi:10.4161/gmcr.18041 57. Callaway E. EU law deals blow to CRISPR crops // Nature. 2018. V. 560. 16. doi:10.1038/d41586-018-05814-6 58. Corcione E. Emergency Measures Against GMOs Between Harmonizing and De-harmonizing Trends: The Case Fidenato et al. // European Papers. 2018. V. 3(1). P. 345-356. doi:10.15166/2499-8249/190 59. Cottenet G., Blancpain C., Chuah P. F. Performance assessment of digital PCR for the quantification of GM-maize and GM-soya events // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2019. V. 411. No.. 11. P. 2461-2469. doi:10.1007/s00216-019-01692-7 60. Demeke T., Dobnik D. Critical assessment of digital PCR for the detection and quantification of genetically modified organisms // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2018. V. 410. No. 17. P. 4039-4050. doi:10.1007/s00216-018-1010-1 61. Dobnik, D., Demsar, T., Huber, I., Gerdes, L., Broeders, S., Roosens, N., Debode F., Berben G., Zel, J. Inter-laboratory analysis of selected genetically modified plant reference materials with digital PCR // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2018. V. 410. No. 1. P. 211-221. doi:10.1007/s00216-017-0711-1 62. Dobnik, D., Spilsberg, B., Bogozalec Kosir, A., Holst-Jensen, A., Zel, J. Multiplex quantification of 12 European Union authorized genetically modified maize lines with droplet digital polymerase chain reaction // Analytical Chemistry. 2015. V. 87. No. 16. С. 8218-8226. doi:10.1021/acs.analchem.5b01208 63. Dobrovidova O. Russia joins in global gene-editing bonanza // Nature. 2019. V.569(7756). P.319-320. doi:10.1038/d41586-019-01519-6 64. Du, Y., Luo, S., Yu, L., Cui, T., Chen, X., Yang, J., Li X., Li W., Wang J., Zhou, L. Strategies for identification of mutations induced by carbon-ion beam irradiation in Arabidopsis thaliana by whole genome re-sequencing // Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 2018. V. 807. P. 21-30. doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2017.12.001 65. Eriksson D, Custers R, Edvardsson Björnberg K, Hansson SO, Purnhagen K, Qaim M, Romeis J, Schiemann J, Schleissing S, Tosun J, Visser RGF. Options to Reform the European Union Legislation on GMOs: Scope and Definitions // Trends Biotechnol. 2020. V.38(3). P.231-234. doi:10.1016/j.tibtech.2019.12.002 66. Eriksson D, Custers R, Edvardsson Björnberg K, Hansson SO, Purnhagen K, Qaim M, Romeis J, Schiemann J, Schleissing S, Tosun J, Visser RGF. Options to Reform the European Union Legislation on GMOs: Risk Governance // Trends Biotechnol. 2020a. V.38(4). P.349-351. doi:10.1016/j.tibtech.2019.12.016 67. Feinberg, M., Fernandez, S., Cassard, S., Charles-Delobel, C., Bertheau, Y. Quantitation of 35S promoter in maize DNA extracts from genetically modified organisms using real-time polymerase chain reaction, part 2: interlaboratory study // Journal of AOAC International. 2005. V. 88. No. 2. P. 558-573. doi:10.1093/jaoac/88.2.558 68. Garcia, A., Aguado, E., Parra, G., Manzano, S., Martínez, C., Megías, Z., Cebrian G., Romero J., Beltran S., Garrido D., Jamilena, M. Phenomic and genomic characterization of a mutant platform in Cucurbita pepo // Frontiers in Plant Science. 2018. V. 9. P. 1049. doi:10.3389/fpls.2018.01049 69. Gerdes, L., Iwobi, A., Busch, U., Pecoraro, S. Optimization of digital droplet polymerase chain reaction for quantification of genetically modified organisms // Biomolecular Detection and Quantification. 2016. V. 7. P. 9-20. doi:10.1016/j.bdq.2015.12.003 70. Gonsalves C., Lee D. R., Gonsalves D. The adoption of genetically modified papaya in Hawaii and its implications for developing countries // The Journal of Development Studies. 2007. V.43(1). P.177-191. doi:10.1080/00220380601055650 71. Gryson N. Effect of food processing on plant DNA degradation and PCR-based GMO analysis: a review // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2010. V. 396. No. 6. P. 2003-2022. doi:10.1007/s00216-009-3343-2 72. Gupta, P., Reddaiah, B., Salava, H., Upadhyaya, P., Tyagi, K., Sarma, S., Datta S., Malhotra B., Thomas S., Sunkum A., Devulapalli, S., Till B.J., Sreelakshmi Y., Sharma R. Next-generation sequencing (NGS)-based identification of induced mutations in a doubly mutagenized tomato (Solanum lycopersicum) population // Plant Journal. 2017. V. 92. No. 3. P. 495-508. doi:10.1111/tpj.13654 73. Hahn F., Nekrasov V. CRISPR/Cas precision: do we need to worry about off-targeting in plants? Plant Cell Rep. 2019. V.38. P. 437-441. doi:10.1007/s00299-018-2355-9 74. Hightower R, Baden C, Penzes E, Lund P, Dunsmuir P. Expression of antifreeze proteins in transgenic plants. Plant Mol Biol. 1991 Nov;17(5):1013-21. DOI:10.1007/bf00037141 75. Hussain, M., Iqbal, M. A., Till, B. J., Rahman, M. U. Identification of induced mutations in hexaploid wheat genome using exome capture assay // PloS One. 2018. V. 13. No. 8. e0201918. doi:10.1371/journal.pone.0201918 76. Jorasch P. Will the EU stay out of step with science and the rest of the world on plant breeding innovation? // Plant Cell Rep. 2020. V.39(1). P.163-167. doi:10.1007/s00299-019-02482-2 77. Kodama, T., Kasahara, M., Minegishi, Y., Futo, S., Sawada, C., Watai, M., Akiyama H., Teshima R., Kurosawa Y., Furui S., Hino, A., Kitta K. Qualitative PCR Method for Roundup Ready® Soybean: Interlaboratory Study // Journal of AOAC International. 2011. V. 94. No. 1. P. 224-231. doi:10.1093/jaoac/94.1.224 78. Kodama, T., Kurosawa, Y., Kitta, K., Naito, S. Tendency for interlaboratory precision in the GMO analysis method based on real-time PCR // Journal of AOAC International. 2010. V. 93. No. 2. P. 734-749. doi:10.1093/jaoac/93.2.734 79. Korotkova A.M., Gerasimova S.V., Khlestkina E.K. Current achievements in modifying crop genes using CRISPR/Cas system. // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019. Т. 23(1). С. 29-37. doi:10.18699/VJ19.458 80. Kosir, A. B., Demsar, T., Stebih, D., Zel, J., Milavec, M. Digital PCR as an effective tool for GMO quantification in complex matrices // Food Chemistry. 2019. V.294. P.73-78. doi:10.1016/j.foodchem.2019.05.029 81. Kurup V.M., Thomas J. Edible vaccines: Promises and challenges // Mol. Biotechnol. 2020. V.62(2). P.79-90. doi:10.1007/s12033-019-00222-1 82. Lamichhane, J. R., Devos, Y., Beckie, H. J., Owen, M. D., Tillie, P., Messéan, A., Kudsk, P. Integrated weed management systems with herbicide-tolerant crops in the European Union: lessons learnt from home and abroad // Critical Reviews in Biotechnology. 2017. V. 37(4). P. 459-475. doi:10.1080/07388551.2016.1180588 83. Lee, M. S., Anderson, E. K., Stojsin, D., McPherson, M. A., Baltazar, B., Horak, M. J., Fuente J.M., Wu K., Crowly J.H., Rayburn A.L., Lee, D. Assessment of the potential for gene flow from transgenic maize (Zea mays L.) to eastern gamagrass (Tripsacum dactyloides L.) // Transgenic research. 2017. V. 26. No. 4. P. 501-514. doi:10.1007/s11248-017-0020-7 84. Lievens, A., Bellocchi, G., De Bernardi, D., Moens, W., Savini, C., Mazzara, M., Van den Eede G., Van den Bulcke, M. Use of pJANUS™-02-001 as a calibrator plasmid for Roundup Ready soybean event GTS-40-3-2 detection: an interlaboratory trial assessment // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2010. V. 396. No. 6. P. 2165-2173. doi:10.1007/s00216-009-3346-z 85. Macarthur R., Feinberg M., Bertheau Y. Construction of measurement uncertainty profiles for quantitative analysis of genetically modified organisms based on interlaboratory validation data // Journal of AOAC International. 2010. V. 93. No. 3. P. 1046-1056. doi:10.1093/jaoac/93.3.1046 86. Macarthur R, Murray AW, Allnutt TR, Deppe C, Hird HJ, Kerins GM, Blackburn J, Brown J, Stones R, Hugo S. Model for tuning GMO detection in seed and grain. Nat Biotechnol. 2007. V.25(2). P.169-q70. DOI:10.1038/nbt0207-169 87. Manghwar H, Lindsey K, Zhang X, Jin S. CRISPR/Cas System: Recent Advances and Future Prospects for Genome Editing // Trends Plant Sci. 2019. V.24(12). P.1102-1125. doi:10.1016/j.tplants.2019.09.006 88. Matveeva T. V., Bogomaz D. I., Pavlova O. A., Nester E. W., Lutova L. A. Horizontal gene transfer from genus Agrobacterium to the plant Linaria in nature. Mol. Plant-Microbe Interact. 2012. V. 25. P. 1542-1551. DOI:10.1094/MPMI-07-12-0169-R 89. Matveeva T. V., Lutova L. A. Horizontal gene transfer from Agrobacterium to plants. Frontiers in Plant Science. 2014. V. 5: 326. DOI:10.3389/fpls.2014.00326 90. Matveeva T. V., Otten L. Widespread occurrence of natural genetic transformation of plants by Agrobacterium // Plant Molecular Biology. 2019. V. 101. No. 4-5. P. 415-437. doi:10.1007/s11103-019-00913-y 91. Mercer K, Martínez-Vásquez Á, Perales HR. Asymmetrical local adaptation of maize landraces along an altitudinal gradient // Evol Appl. 2008. V.1(3). P.489-500. doi:10.1111/j.1752-4571.2008.00038.x. 92. Metje-Sprink J., Sprink T., Hartung F. Genome-edited plants in the field // Current Opinion in Biotechnology. 2020. V. 61. P. 1-6. doi:10.1016/j.copbio.2019.08.007 93. Miglani G. Genome editing in crop improvement: Present scenario and future prospects // Journal of Crop Improvement. 2017. V. 31(4). P.453-559. DOI:10.1080/15427528.2017.1333192 94. Mikhaylova E. V., Kuluev B. R., Khaziakhmetov R. M. Assessment of the propensity for hybridization between genetically modified oilseed rape and its nontransgenic relatives // Russian Journal of Genetics: Applied Research. 2016. V. 6. N. 6. P. 684-697. doi:10.1134/S2079059716060058 95. Morisset, D., Stebih, D., Milavec, M., Gruden, K., Zel, J. Quantitative analysis of food and feed samples with droplet digital PCR // PloS One. 2013. V. 8. No. 5. doi:10.1371/journal.pone.0062583 96. National Academies of Sciences, Engineering, and Medicine. Genetically Engineered Crops: Experiences and Prospects. Washington, DC: The National Academies Press. 2016. 606 P. DOI:10.17226/23395 97. Ossowski S., Schneeberger K., Lucas-Lledó J.I., Warthmann N., Clark R.M., Shaw R.G., Weigel D., Lynch M. The rate and molecular spectrum of spontaneous mutations in Arabidopsis thaliana // Science. 2010. V. 327. P. 92‒94. DOI:10.1126/science.1180677 98. Panchin A. Y., Tuzhikov A. I. Published GMO studies find no evidence of harm when corrected for multiple comparisons // Critical Reviews in Biotechnology. 2017. V. 37. No. 2. P. 213-217. doi:10.3109/07388551.2015.1130684 99. Paoletti, C., Donatelli, M., Kay, S., Van den Eede, G. Simulating kernel lot sampling: the effect of heterogeneity on the detection of GMO contaminations // Seed Science and Technology. 2003. V. 31. No. 3. P. 629-638. doi:10.15258/sst.2003.31.3.12 100. Podevin N., Devos Y., Davies H.V., Nielsen K.M. Transgenic or not? No simple answer! New biotechnology-based plant breeding techniques and the regulatory landscape // EMBO Rep. 2012. V.13. P.1057--1061. doi:10.1038/embor.2012.168 101. Purnhagen KP, Kok E, Kleter G, Schebesta H, Visser RGF, Wesseler J. EU court casts new plant breeding techniques into regulatory limbo // Nat Biotechnol. 2018. V.36(9). P.799-800. doi:10.1038/nbt.4251 102. Purnhagen KP, Kok E, Kleter G, Schebesta H, Visser RGF, Wesseler J. The European Union Court's Advocate General's Opinion and new plant breeding techniques // Nat. Biotechnol. 2018. V.36(7). P.573-575. doi:10.1038/nbt.4174 103. Riet-Correa F, Rivero R, Odriozola E, Adrien Mde L, Medeiros RM, Schild AL. Mycotoxicoses of ruminants and horses. J. Vet. Diagn. Invest. 2013. V.25(6). P.692-708. doi:10.1177/1040638713504572 104. Ruffell D. The EU Court of Justice extends the GMO Directive to gene-edited organisms // FEBS Lett. 2018. V.592(22). P.3653-3657. doi:10.1002/1873-3468.13293 105. Rybicki E.P. Plant-made vaccines for humans and animals // Plant Biotechnol. J. 2010. V.8(5). P.620-637. doi:10.1111/j.1467-7652.2010.00507.x 106. Satheesh V, Zhang H, Wang X, Lei M. Precise editing of plant genomes - Prospects and challenges. // Semin Cell Dev Biol. 2019. V.96. P.115-123. doi:10.1016/j.semcdb.2019.04.010 107. Schindele A, Dorn A, Puchta H. CRISPR/Cas brings plant biology and breeding into the fast lane. // Curr Opin Biotechnol. 2019. V.61. P.7-14. doi:10.1016/j.copbio.2019.08.006 108. Schulman AH, Oksman-Caldentey KM, Teeri TH. European Court of Justice delivers no justice to Europe on genome-edited crops // Plant Biotechnol J. 2020. V.18(1). P.8-10. doi:10.1111/pbi.13200 109. Shirasawa K., Hirakawa H., Nunome T., Tabata S., Isobe S. Genome-wide survey of artificial mutations induced by ethyl methanesulfonate and gamma rays in tomato // Plant Biotechnol J. 2016. V.14. P.51-60. doi:10.1111/pbi.12348. 110. Sidhu G., Mohan A., Zheng P., Dhaliwal A.K., Main D., Gill K.S. Sequencing-based high throughput mutation detection in bread wheat // BMC Genomics. 2015. 16:962. DOI:10.1186/s12864-015-2112-1 111. Sohrab S.S., Suhail M., Kamal M.A., Husen A., Azhar E.I. Recent development and future prospects of plant-based vaccines // Curr. Drug Metab. 2017. V.18(9). P.831-841. doi:10.2174/1389200218666170711121810 112. Stokstad E. After 20 years, golden rice nears approval // Science. 2019. V.366(6468). P.934. doi:10.1126/science.366.6468.93 113. Takabatake, R., Onishi, M., Koiwa, T., Futo, S., Minegishi, Y., Akiyama, H., Teshima R., Kurashima T., Mano J., Furui S., Kitta, K. Development and interlaboratory validation of quantitative polymerase chain reaction method for screening analysis of genetically modified soybeans // Biological and Pharmaceutical Bulletin. 2013. V. 36. No. 1. P. 131-134. doi:10.1248/bpb.b12-00766 114. Tan S.C., Yiap B.C. DNA, RNA, and protein extraction: the past and the present // J. Biomed. Biotechnol. 2009. 2009:574398. doi:10.1155/2009/574398 115. Tang X., Liu G., Zhou J., Ren Q., You Q., Tian L., Xin X., Zhong Z., Liu B., Zheng X., Zhang D., Malzahn A., Gong Z., Qi Y., Zhang T., Zhang Y. A large-scale whole-genome sequencing analysis reveals highly specific genome editing by both Cas9 and Cpf1 (Cas12a) nucleases in rice // Genome Biol. 2018. V.19. 84. doi:10.1186/s13059-018-1458-5 116. Thatcher S.A. DNA/RNA preparation for molecular detection // Clin. Chem. 2015. V.61(1). P.89-99. doi:10.1373/clinchem.2014.221374 117. Tsuda M, Watanabe KN, Ohsawa R. Regulatory status of genome-edited organisms under the Japanese Cartagena Act // Front Bioeng Biotechnol. 2019. V.7:387. doi:10.3389/fbioe.2019.00387 118. Urnov F., Ronald P.C., Carroll D. A call for science-based review of the European court's decision on gene-edited crops. // Nat. Biotechnol. 2018. V. 36. P. 800-802. doi:10.1038/nbt.4252 119. Waltz E. With a free pass, CRISPR-edited plants reach market in record time // Nat. Biotechnol. 2018. V. 36. P. 6-7. doi:10.1038/nbt0118-6b. 120. Weighardt F. European GMO labeling thresholds impractical and unscientific // Nature Biotechnology. 2006. V.24. P.23-25. DOI:10.1038/nbt0106-23b 121. Weighardt F. GMO quantification in processed food and feed // Nat. Biotechnol. 2007. V.25. P.1213-1214. DOI:10.1038/nbt1107-1213c 122. Wolt J.D., Wang K., Sashital D., Lawrence-Dill C.J. Achieving plant CRISPR targeting that limits off-target effects // Plant Genome. 2016. V. 9. DOI:10.3835/plantgenome2016.05.0047 123. Wong N., Liu W., Wang X. WU-CRISPR: characteristics of functional guide RNAs for the CRISPR/Cas9 system // Genome Biol. 2015. V.16, 218. DOI:10.1186/s13059-015-0784-0 124. Wu Y, Li J, Li X, Zhai S, Gao H, Li Y, Zhang X, Wu G. Development and strategy of reference materials for the DNA-based detection of genetically modified organisms // Anal Bioanal Chem. 2019. V.411(9). P.1729-1744. doi:10.1007/s00216-019-01576-w 125. Yamamura K., Mano J., Shibaike H. Optimal definition of the limit of detection (LOD) in detecting genetically modified grains from heterogeneous grain lots // Quality Technology & Quantitative Management. 2019. V. 16. No. 1. P. 36-53. doi:10.1080/16843703.2017.1347992 126. Zhu, P., Wang, C., Huang, K., Luo, Y., Xu, W. A novel pretreatment-free duplex chamber digital PCR detection system for the absolute quantitation of GMO samples // International Journal of Molecular Sciences. 2016. V. 17. No. 3. P. 402. doi:10.3390/ijms17030402 127. Zimny T, Sowa S, Tyczewska A, Twardowski T. Certain new plant breeding techniques and their marketability in the context of EU GMO legislation - recent developments // N. Biotechnol. 2019. V.51. P.49-56. doi:10.1016/j.nbt.2019.02.003