Иммунолокализация липид-транспортирующих белков в растениях гороха в норме и при засолении
Год: 2018
Страницы: 372-380
Номер: Том 10, № 4
Тип: научная статья
Аннотация:
Иммуногистохимическое окрашивание срезов корня растений гороха с помощью специфических антител к липид-транспортирующим белкам (ЛТБ) выявило их присутствие по периметру клеток, расположенных преимущественно в зоне флоэмы. Добавление хлорида натрия в прикорневую среду растений до концентрации 50 мМ приводило к повышению уровня ЛТБ в области флоэмы. Гистохимическое окрашивание срезов на суберин с помощью судана обнаружило ускорение формирования поясков Каспари в области эндодермы под влиянием засоления, что соответствовало повышенному уровню окрашивания на ЛТБ. Эти данные подтверждают гипотезу об участии ЛТБ гороха в отложении суберина. Засоление вызывало повышение иммуноокрашивания на АБК клеток корня. Однако, распределение данного гормона отличалось от локализации ЛТБ в корнях. Следовательно, это не могло подтвердить предположение о прямом влиянии АБК на накопление ЛТБ в клетках корня гороха при засолении. Обсуждается разнообразие предполагаемых функций ЛТБ в растениях.
Ключевые слова:
горох, липид-транспортирующие белки, АБК, иммунолокализация, суберин, засоление
Библиографический список:
- Ахиярова Г.Р., Фрике В., Веселов Д.С., Кудоярова Г.Р., Веселов С.Ю Накопление и распределение АБК в тканях листа и устьичная проводимость при водном стрессе, индуцированном засолением. Цитология. 2006. Т. 48. №11. С. 918-923. @@ Akhiyarova G.R., Fricke W., Veselov D.S., Kudoyarova G.R., Veselov S.Yu. ABA accumulation and distribution during the leaf tissues shows its role stomatal conductance regulation under short – term salinity. Citologiya. 2006. T. 48. № 11. S. 918–923.
- Веселов С.Ю. Использование антител для количественного определения, очистки и локализации регуляторов роста растений. Уфа: Башкирский университет, 1998. 138 с. @@ Veselov S.Yu. Ispolzovanie antitel dlya kolichestvennogo opredeleniya, ochistki i lokalizacii regulyatorov rosta rastenii. Ufa: Bashkirskii universitet, 1998. 138 s.
- Фурст Г.Г. Методы анатомо-гистохимического исследования растительных тканей. М.: Наука, 1979. 155 с. @@ Furst G.G. Metodi anatomo - gistohimicheskogo issledovaniya rastitelnih tkanei. M.: Nauka, 1979. 155 s.
- Финкина Е.И., Мельникова Д.Н., Богданов И.В., Овчинникова Т.В. Белки системы врожденного иммунитета растений, осуществляющие транспорт липидов: структура, функции и практическое применение. Acta Naturae. 2016. Т.8. № 2(29). С. 20-36. @@ Finkina E.I., Melnikova D.N., Bogdanov I.V., Ovchinnikova T.V. Belki sistemi vrojdennogo immuniteta rastenii, osuschestvlyayuschie transport lipidov: struktura, funkcii i prakticheskoe primenenie. Acta Naturae. 2016. Т.8. № 2(29). S. 20-36.
- Abdelkader, A.B., Mazliak P. Echanges de lipides entre mitochondries, microsomes et surnageant cytoplasmique de cellules de pomme de terre ou de chou-fleur. Eur. J. Biochem. 1970. V. 15. P. 250–262.
- Bogdanov I.V., Finkina E.I., Balandin S.V., Melnikova D.N., Stukacheva E.A., Ovchinnikova T.V. Structural and functional characterization of recombinant isoforms of the lentil lipid transfer protein. Acta Naturae. 2015. V. 7. P. 65-73.
- Bogdanov I.V., Shenkarev Z.O., Finkina E.I., Melnikova D.N., Rumynskiy E.I., Arseniev A.S., Ovchinnikova T.V. A novel lipid transfer protein from the pea Pisum sativum: isolation, recombinant expression, solution structure, antifungal activity, lipid binding, and allergenic properties. BMC Plant Biol. 2016. V. 16. P. 107-124. DOI:10.1186/s12870-016-0792-6
- Cameron K.D., Teece M.A., Smart L.B. Increased accumulation of cuticular wax and expression of lipid transfer protein in response to periodic drying events in leaves of tree tobacco. Plant Physiol. 2006. V. 140. Р. 176–183. DOI:10.1104/pp.105.069724
- Carella P., Merl - Pham J., Wilson D.C., Dey S., Hauck S.M., Vlot A.C. Cameron R.K. Comparative proteomics analysis of phloem exudates collected during the induction of systemic acquired resistance. Plant Physiol. 2016. V.171. P.1495-510. DOI:10.1104//pp.16.00269
- Cheng C.S., Samuel D., Liu Y.J., Shyu J. C., Lai S.M., Lin K.F., Lyu P.C. Binding mechanism of nonspecific lipid transfer proteins and their role in plant defense. Biochem. 2004. V. 43. P. 13628–13636. DOI:10.1021/bi048873j
- Douliez J.P., Michon T., Marion D. Steady-state tyrosine fluorescence to study the lipid-binding properties of a wheat non-specific lipid-transfer protein (nsLTP1). Biochim. Biophys. Acta. 2000. V. 1467. P. 65–72. DOI:10.1016/S0005-2736(00)00197-8
- Edstam M.M., Edqvist J. Involvement of GPI-anchored lipid transfer proteins in the development of seed coats and pollen in Arabidopsis thaliana. Physiol Plant. 2014. V. 152(1). Р. 32–42. DOI:10.1111/ppl.12156
- Guelette B.S., Benning U.F., Hoffman-Benning S. Identification of lipids and lipid binding proteins in phloem exudate from Arabidopsis thaliana. J. Exp. Bot. 2012. V. 63. P. 3603-3616. DOI:10.1093/jxb/ers028
- Hoh F., Pons J.L., Gautier M.F., de Lamotte F., Dumas C. Structure of a liganded type 2 non-specific lipid transfer protein from wheat and the molecular basis of lipid binding. Acta Crystallogr. D. Biol. Crystallogr. 2005. V.61. P.397–406. DOI:10.1107/S09074449050004174
- Kader J.C. Lipid-transfer proteins in plants. Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant. Mol. Biol. 1996. V. 47. P. 627–654. DOI:10.1146/annurev.arplant.47.1.627
- Kim T.H., Kim M.C., Park J.H. Differential expression of rice lipid transfer protein gene (LTP) classes in response to abscisic acid, salt, salicylic acid, and the fungal pathogen Magnaporthe grisea. J. Plant Biol. 2006. V. 49. P. 371-375. DOI:10.1007/BF03178814
- Lee S.B., Go Y.S., Bae H.J., Park J.H., Cho S.H., Cho H.J., Lee D.S., Park O.K., Hwang I., Suh M.C. Disruption of glycosylphosphatidylinositol-anchored lipid transfer protein gene altered cuticular lipid composition, increased plastoglobules, and enhanced susceptibility to infection by the fungal pathogen Alternaria brassicicola. Plant Physiol. 2009. V. 150. № 1. Р. 42–54. DOI:10.1104/pp.109.137745
- Pato C., Borgne M., Baut G., Papec P., Marion D., Douliez J.P. Potential application of plant lipid transfer proteins for drug delivery. Biochem. Pharmacol. 2001. V. 62. P. 555–560. DOI:10.1016/S0006-2952(01)00708-0
- Perumalla C.J., Peterson C.A. Deposition of Casparian bands and suberin lamellae in the exodermis and endodermis of young corn and onion roots. Can. J. Bot. 1986. V. 64. P. 1873-1878.
- Samuel D., Liu Y.J., Cheng C.S., Lyu P.C. Solution structure of plant nonspecific lipid transfer protein-2 from rice (Oryza sativa). J. Biol. Chem. 2002. V. 277. P. 35267–35273. DOI:10.1074/jbc.M203113200
- Simorre J., Caille A., Dominique M., Didier M.,.Ptak M. Two- and three-dimensional 1H NMR studies of a wheat phospholipid transfer protein: sequential resonance assignments and secondary structure. Biochem. 1991. V. 30. P. 11600–11608. DOI:10.1021/bi00113a016
- Tassin S., Broekaert W. F., Marion D., Acland D.P., Ptak M., VovelleF., Sodano P. Solution structure of ace-amp1, a potent antimicrobial protein extracted from onion seeds. Structural analogies with plant nonspecific lipid transfer proteins. Biochem. 1998. V. 37. P. 3623–3637. DOI:10.1021/bi9723515
- Tsuboi S., Osafune T., Tsugeki R., Nishimura M., Yamada M. Nonspecific lipid transfer protein in castor bean cotyledon cells: subcellular localization and a possible role in lipid metabolism. J. Biochem. 1992. V. 3. P. 500–508.
- Veselov D.S., Sharipova G.V., Veselov S.Yu., Kudoyarova G.R. The effects of NaCl treatment on water relations, growth and ABA content in barley cultivars differing in drought tolerance. J. Plant Growth Regul. 2008. V. 27. P. 380–386. DOI:10.1007/s00344-008-9064-5