Biomics

Анализ изменений транскрипционной активности некоторых генов в покровно-мышечных тканях личинок комнатной мухи III возраста при тепловом стрессе и после обработки экдистероном в низкой концентрации выявил наличие особенностей в механизмах реализации ответа на стрессовые воздействия у особей из инбредных линий, различающихся по срокам массовой репродукции и продолжительности жизни. По способности организма к восстановлению исходных параметров, к которым можно отнести и содержание мРНК конкретных генов из определенных генных ансамблей, представляется возможным оценивать силу и длительность стрессовых воздействий и адекватность защитных реакций. Особенности динамики изменений в ответ на стрессовое воздействие могут оказаться характерными для данной популяции. Работа поддержана грантом РФФИ № 15-04-04801-a

стресс, транскриптом, продолжительность жизни, комнатная муха, 20-гидрооксиэкдизон

1. Селье Г.Стресс без дистресса. М.: Прогресс, 1979.— 123 с. 
2. Беньковская Г. В. Возможности и ограничения изменений продолжительности жизни в лабораторном эксперименте // Успехи геронтол. 2010. Т. 23. № 3. С. 442– 446.
3. Никоноров Ю.М., Беньковская Г.В. Механизмы поддержания полиморфизма по продолжительности жизни в лабораторных линиях комнатной мухи. // Успехи геронтол. 2013. Т. 26. № 4. С. 594–600.
4. Беньковская Г.В., Соколянская М.П. Адаптивная значимость формирующейся устойчивости к стрессорам разного типа в лабораторных популяциях комнатной мухи. // Экология. 2010. № 3. С. 227-231.
5. Livak K. J., Schmittgen T. D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method // Methods. 2001. Vol. 25. P. 402–408.
6. Kozlova T., Thummel C.S. Spatial patterns of ecdysteroid receptor activation during the onset of Drosophila metamorphosis // Development. 2002. V.129. P.1739-1750
7. Грунтенко Н.Е. Стресс и размножение насекомых: гормональный контроль // Евразиатский энтомологический журнал. 2008. Т.7. Приложение 1. С.3-46.
8. Rees H.H. Ecdysteroid biosynthesis and activation in relation to function // Eur.J. Entomol. 1995. V.92. P. 9-39.
9. Báthori M, Tóth N, Hunyadi A, Márki A, Zádor E. Phytoecdysteroids and anabolic-androgenic steroids--structure and effects on humans // Curr. Med. Chem. 2008. V.15. No.10. P.75-91.
10. Хлебодарова Т.М. Как клетки защищаются от стресса? // Генетика. 2002. Т. 38. №4. С. 437-452.
11. Parcell D., Lindquist S. The function of heat- shock proteins in stress tolerance: degradation and reactivation of damaged proteins // Annu. Rev. Genet. 1993. V. 27. P. 437-496.
12. Hartl F.U. Molecular chaperones in cellular protein folding // Nature. 1996. V. 381. P. 571- 579.
13. Ratner V.A., Zabanov S.A., Kolesnikova O.V., Vasilyeva L.A. Induction of mobile genetic element Dm412 transpositions in Drosophila genome by heat-shock treatment // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V.89. P. 5650-5654.
14. Васильева Л.Л., Выхристюк О.В., Антоненко О.В., Захаров И.К. Индукция транспозиций мобильных генетических элементов в геноме Drosophila melanogaster различными стрессовыми факторами // Вестник ВОГиС. 2007. Т.11. №3/4. С. 662- 671.
15. Gong, Y., Thompson, J. N. Jr, and Woodruff, R. C. Effect of deleterious mutations on life span in Drosophila melanogaster. // J Gerontol A Biol. Sci. Med. Sci. 2006. V.61. N12. P. 1246-1252.
16. Murray, V. Are transposones a cause of ageing? // Mutat. Res. 1990. V.237. N2. P. 59- 63.
17. Atkinson PW, Warren WD, O’Brochta DA. The hobo transposable element of Drosophila can be cross-mobilized in houseflies and excises like the Ac element of maize // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V.83. P. 9693–9697.
18. Warren, W.D., Atkinson, P.W., and O’Brochta, D.A. The Hermes transposable element from the house fly, Musca domestica, is a short inverted repeat-type element of the Hobo, Ac, and Tam 3 (hAT) element family // Genet. Res. 1994. V.64. P. 82-92.
19. Беньковская Г.В., Салтыкова Е.С., Сухорукова О.С., Николенко А.Г. Метаболическая регуляция двух типов фенолоксидазной активности в онтогенезе комнатной мухи // Онтогенез. 2006. Т. 37. №2. С. 1-7.
20. Hamann S., Strätling W.H. Specific binding of Drosophila nuclear protein PEP (protein on ecdysone puffs) to hsp70 DNA and RNA. // Nucleic Acids Res. 1998. V.26 N.18. P. 4108- 4115. 
21. Евгеньев М.Б., Зацепина О.Г., Какпаков В.Т., Власова И.Е. Комбинированное действие теплового шока и экдизона на транскрипцию политенных хромосом Drosophila melanogaster // Мол. биол. 1985. Т.19. С.483-488.
22. Беньковская Г.В., Мустафина Р.Ш. Влияние светового режима на биохимические показатели развития стресс- реакции в линиях Musca domestica L. с различной продолжительностью жизни // Журн. эвол. биох. и физиол. 2012. Т. 48. № 5. С. 433-438.
23. Ponton F, Chapuis MP, Pernice M, Sword GA and Simpson SJ. Evaluation of potential reference genes for reverse transcription-qPCR studies of physiological responses in Drosophila melanogaster // J. Insect. Physiol. 2011. V. 57. P. 840–850.
24. Ming Zhong, XiangWang, JifangWen, Jifeng Cai, Chang Wu, and Sanaa Mohamed Aly Selection of reference genes for RT-qPCR in the house fly // Acta Biochim Biophys Sin. 2013. V.45. P.1069–1073.
25. Dellavalle R.P., Petersen R., Lindquist S. Preferential deadenylation of Hsp70 mRNA plays a key role in regulating Hsp70 expression in Drosophila melanogaster // Mol. Cell. Biol. 1994. V.14. P.3646-3659.
26. Berger S.L., Meselson M. Production and cleavage of Drosophila Hsp70 transcripts extending beyond the polyadenilation site // Nucl. Acids. Res. 1994. V.22. P. 3218-3235.
27. Musser F.R., Shelton A.M. The influence of post-exposure temperature on the toxicity of insecticides to Ostrinia nubilalis (Lepidoptera: Crambidae) // Pesticide science. 2005. V.61. N5. P. 508-510.   
28. Rinkevich F.D., Zhang L., Hamm R.L., Brady S.G., Lazzaro B.P., Scott J.G. Frequencies of the pyrethroid resistance alleles of Vssc1 and CYP6D1 in house flies from the eastern United   States // Insect Molecular Biology. 2006. V.15. N2. P. 157–167.